Buscar este blog

Magister en Nutrición Acuícola

Magister en Nutrición Acuícola
Universidad Austral de Chile-Sede Puerto Montt

miércoles, 19 de julio de 2017

Vacante: Auxiliar en SRRC. CESAY. Yucatán



El Presidente del Consejo Directivo del Comité Estatal de Sanidad Acuícola de Yucatán A.C. como Organismo Auxiliar de SENASICA, en Coordinación con la Delegación de la SAGARPA en la Entidad y el Gobierno del Estado emiten la presente:

CONVOCATORIA 

A todos los interesados que aspiren a ocupar el puesto de Auxiliar de Campo del Comité Estatal de Sanidad Acuícola de Yucatán A.C., para que participen en el concurso que se realizará bajo las siguientes bases:

martes, 18 de julio de 2017

#Vacante: Profesional de Campo. CAHSAC Hidalgo.




A todos los interesados que aspiren a ocupar el puesto de Profesional de Campo en el Comité Acuícola Hidalguense de Sanidad A.C, en lo sucesivo, "El Comité" a que participen en el concurso que se realizará bajo las siguientes bases.

sábado, 15 de julio de 2017

Virus de la Mionecrosis Infecciosa del Camarón. Un alarmante patógeno viral de camarones Peneidos




El cultivo del camarón blanco, Litopenaeus vannamei, ha influido positivamente en el escenario mundial de producción y exportación de camarón. La producción mundial de camarón de cultivo ha aumentado de 3,4 millones de toneladas en 2013 a 3,6 millones de toneladas en 2014 (Aquaculture Culture Asia-Pacific Magazine). Los productores de Vietnam, Indonesia e India están pasando de la cría de camarón tigre negro al cultivo de L. vannamei . Como resultado, la producción de L. vannamei en Asia aumentó de 2,12 millones de toneladas en 2013 a 2,37 millones detoneladas en 2014 ( FAO, Glob fish, shrimp May-2015 ). El cultivo de monodon fue verdaderamente una víctima de muchos caos como como la Enfermedad de la Mancha Blanca (White Spot Disease-WSD), Síndrome del Caparazón blando (Loose Shell Syndrome LSS) y Síndrome de Crecimiento Lento de Monodon (Slow Growth Syndrome MSGS). Hoy en día el mundo se ha trasladado a L. vannamei debido a su alta productividad, participación de bajo costo y disponibilidad de semillas Libre de Patógenos Específicos (SPF). La enorme tasa de producción de L. vannamei ha impulsado la exportación de la India en el año fiscal 2013-2014 en 1,34,372 toneladas (USD 1,47 mil millones) en comparación con 69,565 toneladas (USD 540,8 millones) durante el año fiscal anterior (Shrimp, 2014). Pero ahora L. vannamei no es más resistente a enfermedades como Virus del Síndrome del Taura (TSV), Enfermedad de la Cabeza Amarilla (YHV Tipo-1), Virus de la Necrosis Hipodérmica y Hematopoyética Infecciosa (IHHNV) y el Síndrome de Mortalidad Temprana (EMS).

La disponibilidad de las poblaciones de SPF de L. vannamei para WSSV ha reducido los brotes de WSSV. Pero aún así, está sufriendo de nuevas enfermedades emergentes como EMS, IMNV y la enfermedad de la deformidad del segmento abdominal (ASDD) ( Sakaew et al., 2008 ).
En este artículo se presenta el estado actual de investigación para el Virus de la Mionecrosis Infecciosa (IMNV) que es una enfermedad viral emergente de L. vannamei.

El virus de la mionecrosis infecciosa es un virus emergente que ha afectado el cultivo de Vannamei de países como el nordeste de Brasil (Andrade et al., 2007) y en la Isla de Java Oriental (Senapin et al., 2007), así como en otros países de Asia Sudoriental. La enfermedad no es amenazante como otras enfermedades virales, como WSSV, YHV, etc., pero puede haber una alta mortalidad debido a condiciones ambientales adversas. De acuerdo a resultados de laboratorio, no hubo mortalidad hasta 9 a 13 días después de la exposición al IMNV ( Tang et al., 2005 ), mientras que puede ocurrir mortalidad significante dentro de 1 a 3 días en los bioensayos con TSV, YHV o WSSV ( Lu et al , 1995, Overstreet et al., 1997, Tang y Lightner, 2000 ). Aunque la progresión de la enfermedad es más lenta en comparación con otras enfermedades virales. Puede haber una pérdida económica significativa debido a mortalidades persistentes y al aumento de la eficiencia de la conversión alimenticia ( Lightner et al., 2004b). Se ha reportado mortalidad acumulada hasta el 80% en Brasil ( Poulos et al., 2006 ). Hay una reducción en el valor de mercado de los supervivientes con músculo necrótico. La enfermedad se informó por primera vez en las zonas de cultivo de camarón de Brasil en 2004 y en 2006, esta se extendió a Indonesia, lo cual se debe al transporte inadecuado de animales vivos. La enfermedad fue responsable de pérdidas económicas por valor de aproximadamente US $ 20 millones (OIE, Organización Mundial de Sanidad Animal, 2009) en 2003. Por lo tanto, para desarrollar conciencia y medidas de control necesarias para la aparición de IMNV, fue enlistada en un reporte por la OIE (Organización Internacional de Epizootias) durante 2005.

Virus de la Myonecrosis Infecciosa (IMNV)
El Virus de la Myonecrosis Infecciosa (IMNV, por sus siglas en inglés) es un emergente virus potencial de camarón que causa una pérdida económica considerable en la acuicultura de camarones ( Nunes et al., 2004 ). La enfermedad fue reportada por primera vez en el Estado de Piauí, Nordeste de Brasil, 2002 en el camarón de pie blanco del Pacífico, Litopenaeus vannamei y fue inicialmente nombrada Myonecrosis Idiopática ( Lightner et al., 2004a, b ). Por último, la enfermedad fue renombrada como mionecrosis infecciosa (IMN) y el agente etiológico fue identificado como un virus, denominado Virus de la Mionecrosis Infecciosa (IMNV) ( Poulos et al., 2006; Tang et al., 2008 ). Aparte de L. vannamei naturalmente susceptible , las otras especies que se sabe son experimentalmente susceptibles son Farfantepenaeus subtilis, Penaeus monodon y Litopenaeus stylirostris. (Lightner et al., 2004a, b, Tang et al., 2005, Coelho et al., 2009). El virus infecta todas las etapas de la vida del camarón incluyendo post larvas, juveniles y adultos, pero la mortalidad fue observada en los juveniles y adultos con aspecto cocido (Nunes et al., 2004). El rango de supervivencia reportado durante la infección es de 35 a 55% en camarones de 12 g con una densidad de población de 60 org/m2 y la pérdida económica se estimó en US $ 20 millones en 2003 (Nunes et al., 2004). Hasta la fecha, la enfermedad estaba restrida sólo a Brasil en América del Sur e Indonesia en Asia. (Lightner et al., 2004a, b, Senapin et al., 2007). Las pérdidas causadas por la enfermedad en 2003 solo se estimaron en 20 millones de dólares (OIE, 2007). Los productores de camarón brasileños sufrieron una pérdida económica de 440 millones de dólares como resultado del brote del IMNV a finales de 2005 ( Andrade et al., 2007 ) y, a finales de 2011, Brasil y Indonesia La pérdida fue aumentada a > 1 mil millones de dólares ( Lightner, 2012 ). Los estudios informaron que el virus de la mionecrosis infecciosa puede aparecer como una co-infección con el Noda Virus Macrobrachium rosenbergii (MrNV) y el virus del síndrome de mancha blanca (WSSV) en Litopenaeus vannamei (Senapin et al., 2013; Feijó et al).

Distribución geográfica del virus
El virus fue reportado por primera vez desde el Nordeste de Brasil en Sudamérica en 2002. Hasta 2007, la enfermedad se restringía sólo a Brasil. Pero en 2007, el virus cruzó su frontera y fue reportado por primera vez en Indonesia en un país asiático, donde se vio en las granjas del oeste de Java, Sumatra, Bangka, Borneo del oeste, Sulawesi del sur, Bali, Lombok y Sumbawa en Asia sudoriental (Sutanto, 2011). Tailandia también reclamó la infección con el virus IMN, pero una investigación más profunda reveló que, aparte de Indonesia, no se contagió a ningún otro país asiático. (Senapin et al., 2011). Desde que se informó por primera vez de Brasil, se cree que este virus es de origen sudamericano. La distribución geográfica está restringida. Se cree que la propagación de la enfermedad a nuevos lugares como Indonesia se debe al movimiento transfronterizo ilegal de reproductores infectados o portadores y postlarvas para la acuicultura ( Flegel, 2006, Senapin y otros, 2007, Walker y Mohan, 2009, Walker y Winton, 2010 ). Ya existen rumores sobre la presencia de virus en países asiáticos distintos de Indonesia, India, China, Malasia, Tailandia y Vietnam. Pero el informe de Senapin et al. en 2011, los declara falsos como contaminación o el síndrome de calambres musculares (blanqueamiento del músculo)( Figura1 ).

Figura 1 Distribución geográfica del Virus de la Myonecrosis Infecciosa (IMNV) en el mundo.


Rango del hospedador y cepas de IMNV 
El virus IMN infecta exclusivamente a los camarones Peneidos. Hasta la fecha, no hay ningún informe de cualquier infección entre las poblaciones silvestres (Tang et al., 2005). El virus infecta de forma natural a los camarones blancos del Pacífico, L. vannamei y camarón marrón del sur, Farfantepenaeus subtilis y ha demostrado experimentalmente infectar, Penaeus monodon, y L. stylirostris (Lightner et al., 2004a, Tang et al., 2005; Coelho et al., 2009 ). No ha habido informes de muerte en P. monodon debido a la infección, pero puede ser un portador potencial del virus (Tang et al., 2005 ). Dado que el principal tejido objetivo de la infección por IMNV son los músculos esqueléticos y que no son órganos vitales, la infección no es tan fatal en comparación con otros virulentos virus del camarón como WSSV, YHV y TSV. Además, el daño iniciado a los tejidos musculares puede ser reparado en las primeras etapas de la infección ( Tang et al., 2005 ). Se han realizado estudios para la identificación de vectores o portadores potenciales del IMNV y recientemente, da Silva et al., 2015 reportaron a Artemia franciscana, organismo vivo utilizado en la alimentación, como vector de la infección por IMNV. Sin embargo, no se observó mortalidad masiva del camarón L. vannamei alimentado con A. franciscana infectado. Esto se debe a que podría actúar como una fuente de IMNV en estanques de cultivo de crecimiento ( da Silva et al., 2015 ). Los bivalvos y los gusanos poliquetos también son reportados como positivos a la infección por IMNV desde estanques infectados aunque sin ninguna certeza para confirmar que son verdaderos vectores o portadores. La presencia del virus puede deberse a la ingestión de los tejidos contaminados o al agua de la zona infectada ( Andrade y Lightner, 2009 ). Datos detallados del rango de huésped de IMNV dados como tabla (Tabla 1).


Tabla 1 . Gama del anfitrión de IMNV.

Si. NoEspecies susceptiblesEdad notificada de susceptibilidadRegión de estudioOtras variables (estacionales / de temperatura)Referencia
1Litopenaeus vannameiSubadultoEstado de Piauí, NE Brasil
Lightner et al., 2004a, 2004b
2Farfantepenaeus subtilisJuvenilesBrasil30 ups Salinidad,  temperatura 27-29 ° C, pH  7,8-7,9, DO 6,4-6,6  ppmCoelho et al., 2009
3Litopenaeus stylirostrisJuvenilesArizona, EE.UU.
Tang et al., 2005
4Penaeus monodonJuvenilesArizona, EE.UU.
Tang et al., 2005
5Artemiafranciscana(como vector)Organismo de alimentación viva - naupliiBrasil30  ppt de salinidad, 28  ° C de temperatura, densidad de almacenamiento 20 nauplii / mlDa Silva et al., 2015


Hasta la fecha, se han descrito cuatro cepas de IMNV y nueve cepas parcialmente secuenciadas. La primera cepa (IMNV_Brazil_2006) fue reportada de Brasil en 2006 ( Poulos et al., 2006 ) y la segunda (IMNV_Indonesia_2006) de Indonesia en 2007 ( Senapin et al., 2007 ). El genoma parcial y completo de los aislados de estas cepas está disponible en el banco de genes. La siguiente tabla muestra información actualizada sobre la secuencia del genoma disponible en la base de datos ( Tabla 2 ).


Tabla 2 . Cepas identificadas de IMNV.

Si. NoNombre de la cepaGeneBank noTipo
1BZ-03AY570982.2Completo
2ID-EJ-06EF061744Completo
3BZ-04-ZS2011001KC200075Parcial
4BZ-07-1HM030799Parcial
5BZ-07-2HM357803Parcial
6ID-LP-11KJ636782Completo
7ID-EJ-12-1KJ636783Completo
8ID-EJ-12-2KJ636784Parcial
9ID-LP-12-1KJ636785Parcial
10ID-EJ-12-3KJ636786Parcial
11ID-LP-12-2KJ636787Parcial
12ID-BB-12KJ636788Parcial
13BZ-11-UAZ219KJ636789Parcial


La secuencia del genoma viral del IMNV aislado de la granja de camarón indonesio muestra 99,6% de similitud con la secuencia brasileña ( Senapin et al., 2007 ). Múltiples alineaciones de la secuencia codificante de la proteína de la cápside viral IMNV brasileña de 372 pb muestra un alto grado de similitud con secuencias de Brasil e Indonesia ( Melo et al., 2014 ). Este análisis sugiere que las cepas de Brasil e Indonesia son genéticamente idénticas y que la cepa indonesia puede provenir de Brasil. Posteriormente, Naim et al. (2015) han determinado y depositado otras dos cepas indonesias IMNV recogidas de la provincia de Lampung en 2011 y la provincia de Java Oriental en 2012. Junto con la secuenciación completa, se intentaron otras 6 secuencias parciales. Sin embargo, reportaron una clara evidencia de diversificación genética entre las cepas brasileñas e indonesias, así como dentro de las cepas indonesias IMNV parcialmente secuenciadas. Comparaciones realizadas entre las cuatro secuencias del genoma completo disponibles, solamente se encontraron un total de 9 aa de sustitución (Naim et al., 2015). De acuerdo con Naim et al. (2015), Coelho-Melo et al. (2014) también confirmaron que la cepa indonesia compartía una alta identidad con la cepa brasileña aislada y caracterizada del estado de Ceará, Brasil. La caracterización de la mayor proteína de la cápside (MCP) del virus reveló que existe una conservación genética entre los aislados virales del estado de Ceará, Brasil (Coelho- Melo et al., 2014). El último análisis filogenético confirmó que los aislados brasileños son más variables que los aislados de Indonesia (Dantas et al., 2015). Estas conclusiones fueron confirmadas por Kibenge y Godoy (2016) construyendo un árbol filogenético no desarraigado basado en la longitud máxima disponible de cada cepa (8 cepas). Los informes analíticos fueron consistentes y confieren a la rama monofilética de cada grupo geográfico (Naim et al., 2015, Dantas et al., 2015, Kibenge y Godoy, 2016).

Basándose en la filogenia de la secuencia de la ARN polimerasa dependiente de ARN (RdRp), es evidente que los Totivirus de los artrópodos son cercanos al clado de Giardiavirus (Oliveira et al., 2014). Sin embargo recientemente Dantas et al. (2016) han informado evidencia suficiente de los Artropodos Totivirus para ser agrupados por separado en el género "Artivirus" dentro de la familia Totiviridae, tal como fue propuesto anteriormente por Zhai et al. (2010).

Transmisión viral

El modo exacto de transmisión del virus IMN no se ha entendido completamente. El comportamiento canibal del camarón infectado puede ser la vía de transmisión horizontal de la enfermedad (Lightner, 2011; Poulos et al., 2006 ). La probabilidad de supervivencia de las partículas virales infecciosas no envueltas es alta en el tracto gastrointestinal de los organismos que se alimentan de los animales infectados, por lo que es probable que se produzca la propagación del virus por ingestión (OIE, 2012). La transmisión a través de los transportistas potenciales como A. fransiscana,  no puede ser eliminado. A pesar de que existen deficiencias en datos específicos sobre los vectores del IMNV (OIE, 2012, da Silva et al., 2015). La probabilidad de transmisión a través del agua y la transmisión vertical desde los reproductores a la progenie no puede ser ignorada. Recientemente, se ha informado de evidencia experimental de transmisión vertical en L. vannamei mediante análisis de PCR en tiempo real de reproductores naturalmente y experimentalmente infectados ( da Silva et al., 2016 ). Basado en el 100% de detección positiva de IMNV en los ovarios y la menor viabilidad de los espermatozoides en los hombres naturalmente infectados, se sugiere que la fuente de transmisión vertical es el origen materno. El virus que pertenece a la familia Totiviridae se transmite a las células no infectadas sólo durante la división celular, esporogénesis en el caso de hongos que infectan virus y fusión celular (Poulos et al., 2006). Sin embargo, el virus IMN y el virus de la miocarditis de Piscine (PMCV) los cuales infectan únicamente el salmón del Atlántico (Salmo salar L.) mostraron una estrategia de transmisión extracelular durante la infección (Haugland et al., 2011). Los estudios generalizan que el virus puede ser transmitido a animales susceptibles a través del modo horizontal vía vectores, la co-habitación a través del agua, el canibalismo y la vía vertical derivada de la madre (Lightner, 2011), da Silva et al ., 2015, da Silva et al., 2016 ).

Diagnóstico de la enfermedad
Signos clínicos

La gravedad de la enfermedad es más frecuente en estadios juveniles y adultos y la mortalidad acumulada en estadios subadultos y adultos oscila entre 40% y 70% (Poulos et al., 2006). Se observó una reducción considerable en el valor de mercado debido a una mortalidad > 40% durante el último ciclo de producción y la mortalidad total aumenta y alcanza hasta el 70% debido a la infección natural en las granjas de acuicultura (Tang et al., 2005). Los camarones gravemente afectados se vuelven moribundos y muestran signos de comportamiento no específicos, como letargo durante o poco después de eventos estresantes tales como compensación, alimentación, cambios repentinos en la temperatura del agua, reducciones repentinas de salinidad del agua. Estos aumentos en el nivel de estrés aumentan la tasa de mortalidad ( Lightner, 2011; Lightner et al., 2004a, b, Nunes et al. 2004; Poulos et al., 2006 ). La temperatura juega un papel crucial en la aparición de la enfermedad y puede comenzar en ambas estaciones. El aumento de la temperatura puede conducir a una alimentación excesiva y por lo tanto la producción de amoniaco por encima del nivel normal. Estas condiciones aumentan los factores de estrés a los camarones y producen elevadas mortalidades. La pérdida de los cultivos generalmente se informa de las granjas cuando el período de cultivo cruza 40 días o más (Flegel et al., 2008; Taukhid y Nur'aini, 2009). Los camarones infectados mostraron menor consumo de alimento y estos reportaron un aumento en la tasa de conversión alimenticia (FCR) de 1,5 a 4,4 en los estanques de cultivo como resultado de que la tasa de supervivencia cayó al 21% (Coelho et al ., 2009, Loy, 2014). La manifestación clínica es prominente en la fase aguda de la infección por IMNV. El músculo esquelético es el sitio primario de la infección, pero también pueden afectar las agallas y el órgano linfoide (Lightner et al., 2004a, b). Hay desde focal hasta extensivas áreas blancas necróticas en músculos estriados (esqueléticos), sobre todo en los segmentos abdominales distales y en la cola. En la fase crónica, las lesiones se acompañan por la licuación de los músculos necróticos. Los músculos y apéndices exhiben una coloración rojiza, dando la apariencia de camarones cocidos (Nunes et al., 2004) Figura 2. La fase aguda del animal infectado exhibe necrosis del músculo coagulante que progresa a necrosis licuefactiva a medida que avanza la enfermedad hasta la fase crónica (Lightner et al., 2004a).

Figura 2 Camarones con IMNV presentan lesiones rojizas sobre el músculo y en su cola 
(Tomado de Engormix. R. Pinheiro Gouveia 2010) 


Histología 
Los métodos convencionales de diagnóstico como la histopatología de los tejidos afectados son una de las mejores maneras de diagnosticar la infección por IMNV en camarones ( Lightner, 1996 ). Los músculos estriados (músculos esqueléticos y menos frecuentemente cardíacos), los tejidos conectivos, los hemocitos y las células del parénquima de los túbulos linfoides son órganos principales en la fase aguda, mientras que la infección se restringe sólo a órganos linfoides en la fase crónica (OIE, 2012; Et al., 2004a, b, Poulos et al., 2006). La infección por IMNV se caracteriza por la presencia de esferoides de órganos linfoides que son 3 a 4 veces más grandes que los túbulos de órganos linfoides normales, los cuerpos de inclusión basófilos oscuros específicos de virus en el miocito, los hemocitos y los tejidos conectivos (Lightner et al., 2004a, B, Poulos et al., 2006 ). Otras manifestaciones que se pueden observar en las secciones teñidas con H&E son necrosis coagulante de músculo estriado, edema, infiltración de hemocitos, fibrosis ( Poulos et al., 2006). El IMNV puede diferenciarse fácilmente del Síndrome del Calambre Muscular de L. vannamei por la presencia de hemocitos infiltrados en el músculo coagulado, que está ausente en el último. ( Senapin et al., 2011 ). El IMNV no replicará en los tejidos entéricos volviendo a los tejidos inadecuados para el diagnóstico (OIE, 2012).

Diagnóstico basado en ácidos nucleicos
La hibridación in situ junto con la sonda marcada con digoxigenina de 993 pb da una señal fuerte con los cuerpos de inclusión presentes en el citoplasma de las células del músculo esquelético infectadas ( Tang et al., 2005 ). Para detectar dsRNA a través de ISH las secciones de tejido se desnaturalizaron a 84°C durante 10 min. Andrade et al. (2008) ha modificado el protocolo ISH descrito por Lightner (1996) para la detección de IMNV en tejido infectado. También ha evaluado el impacto del fijador de Davidson en ISH. Un método rápido y sensible para el diagnóstico definitivo de la enfermedad se desarrolló mediante la RT-PCR (Reacción en cadena de la polimerasa en cadena inversa) por Poulos y Lightner (2006), que tiene un límite de detección de 10 copias del genoma viral. Con el fin de mejorar la sensibilidad de la detección de IMNV Senapin et al. (2007) ha desarrollado un método de detección de RT-PCR anidada, con cebadores específicos para dirigirse a la región RdRp viral en lugar del gen de la cápside dirigido por el kit comercial. Los dos conjuntos de cebadores se diseñaron para amplificar un fragmento interno de 282 pb a partir de los amplicones de 600 pb. Andrade (2007) ha desarrollado una PCR en tiempo real para la detección de IMNV con cebadores y sondas contra una región ORF-1 del genoma viral que es más sensible en comparación con la PCR anidada. Melo et al. (2014) ha desarrollado una técnica de diagnóstico a través de RT-PCR de secuencia de nucleótidos de 372 pb correspondiente a la proteína de la cápside viral. Puthawibool et al. (2009) ha informado de un sistema combinado de RT-LAMP y LFD para la detección de IMNV. El sistema combinado tarda < 75 min con una sensibilidad de detección comparable a la detección anidada por RT-PCR de IMNV. El dispositivo de flujo lateral reduce el tiempo de detección del amplicón y el uso de bromuro de etidio carcinógeno en comparación con la electroforesis. Andrade y Lightner (2009) también han desarrollado el método RT-LAMP-NALF que muestra una sensibilidad equivalente a RT-LAMP (utilizando tres pares de cebadores) y es 100 y 10 veces más sensible que la RT-PCR de un solo paso y RT-LAMP (Dos pares de cebadores), respectivamente. El dispositivo de flujo lateral reduce el tiempo de detección del amplicón y el uso de bromuro de etidio carcinógeno en comparación con la electroforesis. Andrade y Lightner (2009) también han desarrollado el método RT-LAMP-NALF que muestra una sensibilidad equivalente a RT-LAMP (utilizando tres pares de cebadores) y es 100 y 10 veces más sensible que la RT-PCR de un solo paso y RT-LAMP (Dos pares de cebadores), respectivamente. El dispositivo de flujo lateral reduce el tiempo de detección del amplicón y el uso del carcinogénico bromuro de etidio en comparación con la electroforesis. Andrade y Lightner (2009) también han desarrollado el método RT-LAMP-NALF que muestra una sensibilidad equivalente a RT-LAMP (utilizando tres pares de cebadores) y es 100 y 10 veces más sensible que la RT-PCR de un solo paso y RT-LAMP (Dos pares de cebadores), respectivamente.

Diagnóstico basado en anticuerpos 
Con el fin de desarrollar un método de inmunodiagnóstico que es más rápido y más barato en comparación con los métodos moleculares Anticuerpos policlonales se ha desarrollado contra IMNV ( Melo et al., 2011 ). La purificación del virus se realizó mediante un método de centrifugación en gradiente de sacarosa que es diferente de la ultracentrifugación de CsCl realizada por Poulos et al. (2006) . El anticuerpo específico es capaz de detectar IMNV a traves de Western Blot. El desarrollo de anticuerpos monoclonales es necesario para el inmunodiagnóstico de una enfermedad. Existen dos mAbs desarrollados por Kunanopparat et al. (2011) contra la proteína de la cápside de IMNV que están detectando infecciones naturales de IMNV en Litopenaeus vannamei por transferencia de puntos, Western Blot e inmunohistoquímica. Las sensibilidades de detección de los MAb fueron de aproximadamente 6-8 fmol / punto de proteína recombinante purificada. La combinación de los tres MAbs sensibilidad fue aproximadamente 10 veces inferior a la de un paso RT-PCR utilizando la misma muestra, pero estos son específicos para detectar IMNV y no reacciones cruzadas con otros virus y tejidos de camarón. En el mismo año, Seibert et al. (2010) han desarrollado cuatro MAbs que son específicos de IMNV100 kDa proteína de la cápside mayor. Más que los MAbs, las tiras reactivas de diagnóstico rápido inmuno- cromatográficas se han desarrollado para la detección de IMNV ( Chaivisuthangkura et al., 2013, Wangman et al., 2016 ). La sensibilidad del inmunodiagnóstico se ha incrementado conjugando MAbs con la partícula coloidal de oro.  

Respuesta inmune del huésped 
La actividad antiviral de la respuesta inmune de los crustáceos es un nuevo campo de interés. Se necesitan muchos tipos de investigación para comprender la actividad inmune de los crustáceos en detalle. Hasta ahora lo que entendemos que el sistema inmune de los crustáceos significa la actividad de defensa innata del animal. Esto consiste en el sistema inmune humoral y celular. Hay un grupo diverso de receptores del reconocimiento patrón en crustáceos. La respuesta inmune celular consiste en tres clases de hemocitos, incluidas las células hialinas (HC), hemocitos semicranulares (SGHs) y hemocitos granulares (GHs) Lin y Söderhäll (2011). Existe un gran número de péptidos antimicrobianos presentes en crustáceos tales como las peneidinas (Destoumieux et al., 1997), factores anti-lipopolisacáridos (ALF) (Supungul et al.,2004) y crustins (Bartlett et al 2002).

Un estudio del sistema inmune de Vannamei en respuesta a la infección por IMNV ha sido realizado por Costa et al. (2009). Hay una reducción del 30% en el número circulante de hemocitos en camarones fuertemente infectados. La causa de esta reducción aún no está clara, ya que no hay evidencia de infección del tejido hematopoyético por el virus. El porcentaje de hemocitos apoptóticos son además muy reducidos y esta información sugiere que los hemocitos no son el objetivo primario del virus. Animales infectados severamente tienen significativamente menos hemocitos granulares (7%), los cuales pueden ser a causa de la reducción de la actividad profenoloxidasa. Sin embargo, hay un aumento en intermedios reactivos del oxígeno. La hemolinfa de vannamei infectado muestra actividad antimicrobiana contra Micrococcus luteus y Escherichia coli pero no contra Vibrio harveyi marino. El estudio de los parámetros inmunológicos a través de métodos convencionales no es suficiente y necesita investigación a nivel molecular por PCR en tiempo real. El resultado de la investigación de respuesta inmune a través de RT-PCR cuantitativa de L. vannamei co-infectadas con IHHNV y IMNV ha demostrado un nivel aumentado de HSP-70 expresión por la infección por IHHNV en las agallas de los camarones de doble infectados pero no por la infección IMNV (Vieira -Girão et al., 2012). El aumento del nivel de HSP en respuesta a la infección viral demuestra que actúa como un modulador inmune y ayuda a inducir la inmunidad innata en el caso de infección por IMNV. Los niveles de expresión de crustin, penaeidina y lectina tipo C no están influenciados por este tipo de coinfección. También se observaron mortalidades significativas en los camarones co-infectados con IMNV y Vibrio harveyi ( Sukenda et al., 2015 ). La administración de los probióticos SKT-b y los prebióticos oligosacáridos de la batata ( Ipomea batatas L) aumentaron la respuesta inmune de los camarones blancos contra la infección por IMNV ( Septiani, 2011 ). Los resultados similares fueron probados por Oktaviana y Widanarni (2014) administrando el similar simbiótico, Vibrio alginolyticus SKT-b R y los prebióticos de la batata ( I. batatas L) Oligosacarido separado del desempeño de alto crecimiento (Oktaviana and Widanarni, 2014).

Control y prevención de enfermedades 
A diferencia de los peces, en los crustáceos, la vacunación común no funciona porque tienen alguna memoria en su sistema inmunológico. La investigación en el campo de la vacunación contra las enfermedades virales de los crustáceos está orientada principalmente por RNAi. La inmunoestimulación con dsRNA específico de secuencia da protección contra enfermedades virales diana. Hay pocas investigaciones para la protección del IMNV porque la mayoría de las investigaciones se realizaron para la caracterización del IMNV. Sin embargo, por primera vez Loy et al. (2012) ha informado que una sola dosis baja (0,02 mg) de un fragmento de 81 o 153 pb (dsRNA95-475), con secuencia correspondiente a la supuesta proteína de escisión 1 en ORF1 da 100% de protección contra IMNV y fueron resistentes a subsecuentes infecciones sobre 50 días más tarde con una dosis de virus 100 veces mayor. También ha informado de que el dsRNA dirigido a la proteína estructural y RdRp (dsRNA3764-4805 y dsRNA5518-6391, respectivamente) no es capaz de dar una protección satisfactoria a diferencia de WSSV ( Robalino et al., 2004 ) y YHV ( Tirasophon et al., 2005; Yodmuang et al., 2006 ). El modo de vacunación es muy importante. El método común de vacunación del camarón es a través de la inyección intramuscular, pero Sriyotee Loy (2014) ha informado que la vacunación con dsRNA95-475 (Loy et al., 2012) mediante gavage inverso puede provocar una protección estadísticamente significativa (p < 0,05) contra el IMNV.

Es bien sabido que las bacterias y los hongos tienen LPS y β-1,3-glucano en su superficie las cuales son reconocidas como "extrañas" por la respuesta inmune del huésped. Otra forma que ellos utilizan para desencadenar la respuesta inmune del huésped y proporcionar inmunidad no específica. En insectos y crustáceos, el LPS y los β-1,3-glucanos, al unirse a LPS y la proteína de unión a glucano, activan proPO, la cascada de coagulación y los genes para proteínas antibacterianas ( Hoffmann, 1995, Iwanaga et al. Al., 1998 ). Neto y Nunes (2015) han informado que la adición de 1000 mg / kg de β-1,3 / 1,6-glucano que es un polisacárido extraído y purificado de la pared celular de la levadura de panadería Saccharomyces cerevisiae en una dieta para L. Vannamei mejora la supervivencia del camarón cuando está expuesto por vía oral a IMNV sin ningún efecto secundario después de una exposición a largo plazo. El uso de quitosano que es una glucosamina que tiene una estructura química casi similar a β-1,3-glucano en la alimentación con una dosis de tratamiento de 3 ml / kg de alimento activa Prophenoloxidase (ProPO) de L. vannamei ( Nindarwi et al., 2013 ). El análisis de la interacción de proteínas usando el ensayo de dos híbridos de levadura reveló que el receptor Laminin (Lamr) interactuaba específicamente con proteínas cápside/envoltura de los virus ARN IMNV y YHV y la inmunización con la proteína Lamr recombinante expresada en levadura provocó protección contra YHV en condiciones de laboratorio. Por lo tanto, existe una perspectiva futura de usar rLmar como un inmunoestimulante contra IMNV ( Busayarat et al., 2011 ). El uso de quitosano que es una glucosamina que tiene una estructura química casi similar a β-1,3-glucano en la alimentación con una dosis de tratamiento de 3 ml / kg de alimento activa Prophenoloxidase (ProPO) de L. vannamei ( Nindarwi et al., 2013 ). El análisis de la interacción de proteínas usando el ensayo de dos híbridos de levadura reveló que el receptor Laminin (Lamr) interactuaba específicamente con las proteínas de la cápside / envoltura de los virus ARN IMNV y YHV y la inmunización con la proteína Lamr recombinante expresada en levadura provocó protección contra YHV en condiciones de laboratorio. Por lo tanto, existe una perspectiva futura de usar rLmar como un inmunoestimulante contra IMNV ( Busayarat et al., 2011 ).

El control de enfermedades virales básicas y las estrategias preventivas como el uso de animales libres de patógenos específicos (SPF) y específicos resistentes a patógenos (SPR), las medidas de bioseguridad y el proceso de selección genética para las variedades resistentes a enfermedades ( Moss et al . La Universidad de Arizona ha desarrollado un protocolo de detección de laboratorio para la identificación de líneas de L. vannamei resistentes a IMNV y la subsiguiente reproducción de poblaciones de cría resistentes. Ellos han evaluado 21 líneas familiares de L. vannamei durante un mínimo de 20 días y los resultados mostraron una mejora significativa en la tasa de supervivencia del 3,2% en la generación F1 a 55,3% en la generación F7 ( White-Noble et al., 2010 ). Actualmente se está llevando a cabo el proceso de selección selectiva, por lo que estos resultados no han sido publicados en publicaciones revisadas por pares ( Lima et al., 2013 ). Existe una mortalidad del 20% en caso de infección experimental de L. vannamei, pero no se observó mortalidad en L. stylirostris o P. monodon ( Tang et al., 2005 ). Por lo tanto, la repoblación de estanques con variedades resistentes a IMNV como P. monodon y P. stylirostris puede reducir las pérdidas debidas a las mortalidades. Se cree que IMNV se puede transferir verticalmente, y en tal condición es necesaria la desinfección de huevos y larvas. Además, se deben implementar correctamente otras prácticas generales de crianza  como el uso de reproductores libres de patógenos específicos (SPF), medidas de bioseguridad y adecuadas condiciones de cuarentena. 

Conclusión 
La producción de L. vannamei tiene un gran futuro para los productores de camarón, pero el brote de enfermedades infecciosas puede obstaculizar la exportación de los países, así como la situación socioeconómica de los productores y otras partes interesadas. La situación actual del Camarón Tigre Negro no es responsable del simple virus, sino que se debe a múltiples enfermedades virales. La producción de L. vannamei en algunos países como Tailandia ya está afectada por el SME. Por lo tanto, es hora de pensar en todas las enfermedades virales emergentes si son más o menos infecciosas. En este sentido, los procedimientos de diagnósticos desarrollados y el inminente crecimiento de la investigación sobre profilaxis, constituyeron una fortaleza para la investigación del IMNV, mientras que los estudios fundamentales en biología viral, epidemiología y terapéutica aún se encuentran en pañales. Es necesario que haya más investigación sobre IMNV para ajustar su modo de transmisión, sus posibles vectores, la interacción patógeno-hospedero y el desarrollo de medidas preventivas.

Fuente: Aquaculture: 477: (2017) 99:105.
Infectious Myonecrosis Virus (IMNV) – An alarming viral pathogen to Penaeid shrimps

 #REMAhaciaelfuturo

jueves, 13 de julio de 2017

domingo, 9 de julio de 2017

¿Porqué no ha crecido la producción acuícola en México como en otros países como Myanmar?


¿Porqué no ha crecido la producción acuícola en México como en otros países como Myanmar?


Datos del 2015 indican que en Myanmar el 94% y 5% de la producción acuícola proviene de sistemas dulceacuícolas y marinos, en México corresponde el 30% y 66% respectivamente.
En México, la acuicultura se ha desarrollado por debajo de otros países y una de las principales causas se debe a que las políticas públicas no han sido las adecuadas para consolidar el sector.
En cuanto a normatividad, es importante que se separe la PESCA de la ACUACULTURA, ya que son prácticas totalmente diferentes aunque incluyen un mismo grupo de organismos. Falta generar nuevas Leyes y reglamentos así como modificar y actualizar las existentes ya que se encuentran desactualizadas con grandes vacíos y deben ajustarse de acuerdo al grado de tecnificación de cada Unidad de Producción Acuícola.
Falta una mayor participación y organización de la sociedad civil así como la generación de proyectos integrales que ayuden a mejorar las condiciones sociales y económicas del país dentro del marco de la sustentabilidad. Sobre todo es importante que se impulse la creación de programas que permitan la recuperación y conservación de acuíferos.
México debe apostar a la generación de conocimientos científicos. Necesitamos generar Centros de Investigación que se dediquen a estudiar y consolidar la biotecnología de especies nativas, enfermedades, dietas etc, así como a generar proyectos de transferencia de tecnología.
Urge generar esquemas de financiamiento flexibles que permitan generar y consolidar proyectos acuícolas. Dichos esquemas deben contar con indicadores y medios de verificación transparentes que aseguren la correcta utilización de los recursos y encaminen al productor al éxito del proyecto.
Es INDISPENSABLE generar técnicos de élite dentro de los programas de extensionismo. Los técnicos deben ser especialistas en cada uno de los temas que se estén desarrollando y deben contar con una visión integral. Además, los técnicos que participen dentro de estos programas, deben demostrar, además de su capacidad técnica, una gran pasión por la acuicultura y el desarrollo social. En este sentido es necesario crear una maestrías en Extensionismo para darle a los técnicos las herramientas y que desarrollen las habilidades necesarias para facilitar el conocimiento a los productores.
Es importante impulsar y consolidar los Comités de Sanidad Acuícola y los Sistemas Producto, esto implica que tengan flexibilidad administrativa y con una solvencia económica que les permita desarrollar sus actividades bajo los tiempos establecidos dentro del programas de trabajo sin que tengan que ajustar sus actividades y sus tiempos por falta de recursos.
Finalmente, esto es solo una parte de las cosas que se tienen que hacer y a las cuales nos estamos enfrentando. 

¿Ustedes que opinan? ¿Qué hace falta para que se consolide la acuicultura?
#REMAhaciaelfuturo

sábado, 8 de julio de 2017

3 Vacantes: Lic en Biología. Granja de Camarón. Obregón Sonora

SRY Promotora Acuícola Oferta

3 Vacantes

para trabajar en granja de Camarón en Obregón Sonora.

Puestos: 
- Engargado de Producción
- Supervisor de Cosecha
- Auxiliar Técnico

Requisitos:  Lic en Biología
Habilidades y experiencia: Revisar imágenes adjuntas.
 
Mandar CV a cpdany@hotmail.com
Tel: 414 45 17
Obregón Sonora.







#REMAhaciaelfuturo

martes, 4 de julio de 2017

Video. Conferencia Magistral. Genética en Tilapia. PhD. Greg Lutz. FIACUI2016

Conferencia Magistral
Genética en Tilapia. PhD. Greg Lutz. FIACUI2016





#REMAhaciaelfuturo
Favor de compartir

Post Doctoral Fellow (Aquatic Animal Health). Penang, Malaysia. WorldFish


WorldFish is an international, nonprofit research organization that harnesses the potential of fisheries and aquaculture to reduce hunger and poverty

OFFER:
Post Doctoral Fellow

DESCRIPTION:

The Post Doctoral Fellow will coordinate and conduct research on emerging aquatic animal health challenges as a component of the Fish Health and Nutrition Research Cluster of the CGIAR Research Program on FISH. S/he will involve in epidemiological research on emerging fish diseases and engaging international and national research teams in Bangladesh, Egypt, Malaysia and other WorldFish focal and scaling countries and partners to deliver high quality research on aquatic animal health.

Key Responsibilities
  • Coordinate and conduct research on emerging aquatic animal health issues (e.g. TiLV) in WorldFish program and partner countries.
  • Design and implement epidemiological studies in WorldFish program countries to better understand aquatic animal health constraints, risk factors, economic and social impacts.
  • Support development of interventions such as better management practices for minimizing the impact of aquatic animal diseases.
  • Support the design and implementation of robust biosecurity programs for WorldFish genetics and breeding platforms in Malaysia, Egypt and Bangladesh.
  • Support design and conduct of experimental infection studies in connection with genetics and disease resistance research.
  • Ensure regular coordination with national partners in WorldFish focal and scaling countries and support development and implementation of a practical national strategies on aquatic animal health.
  • To provide support to national research teams in Bangladesh, Egypt and Malaysia and other WorldFish program countries to design implement and deliver high quality science.
  • To develop evidence based tools, guidelines, policy briefs, fact sheets and quality science based products to support aquatic animal health management.
  • To conduct literature reviews, analyse project reports, organize workshops and consult with WorldFish global and country teams for project concepts, networking and partnership building.
  • Prepare scientific publications, working papers, program briefs and other research products in support of FISH CRP health research.

REQUIREMENTS

Skills and Qualifications
  • Ph.D. in related field (aquatic animal health, epidemiology, etc).
  • 3 years related research experience and excellent knowledge, technical and writing skills in aquaculture and aquatic animal health and demonstrated ability to perform critical thinking on research issues.
  • Experience in conventional and molecular diagnostics and fish immunology.
  • Knowledge of aquatic epidemiology (experience in the use of epidemiology models and software for statistical analyses) and socio-economic impact assessments.
  • Experience in synthesizing results from disparate studies and publishing research findings.
  • Strong commitment to work on research with implications for FISH CRP and development outcomes and impact.
  • Fully familiar with state of the art computer programs and other software for data capture, storage, retrieval and analyses of data.
  • Strong project management skills.
  • Ability and willingness to travel and able to work in multi-disciplinary teams.
  • Experience in graduate student supervision.
  • Publications and resource mobilization track record.
  • Experience with the private sector and international organizations.
  • Relevant working experience in developing countries and experiences with modelling, epidemiology, disease diagnostics.
  • Knowledge in “big data” applications and tools for disease surveillance and diagnostics.

BENEFITS

Salary and Benefits
This is an Internationally Recruited Staff (IRS) position with annual salary ranging between USD 42,000 – USD 46,000 per annum.
WorldFish's IRS shall receive comprehensive benefits including (but not limited to) housing allowance*, relocation and repatriation assistance*, dependent education allowance*, home leave entitlement*, comprehensive insurance coverage for staff and eligible dependents, and pension/provident fund contribution.
Note: Items marked * are not applicable to staff recruited as Home Country Internationals (nationals of the country of posting). All benefits are subject to terms and conditions.
Time frame and location
This position will be based at WorldFish’s HQ in Penang, Malaysia with significant travel to various countries in Africa, Asia and Pacific. Interviews are expected to be held in July 2017.
The successful candidate should be available to commence latest by October 2017 for an initial 2 years contract, with possibility of extension depending on performance of and the availability of funding. Due to the high volume of applicants for WorldFish positions, we appreciate all interest, but only short-listed candidates will be notified.
Our commitment
WorldFish is committed to promoting a work environment where diversity of thought, style, culture and experience is valued. We support individual performance and potential in achieving our organizational goals and mission. Qualified women and professionals are encouraged to apply.
How to apply
Interested applicants are invited to submit the following information online latest by 31 July 2017:
  • A cover letter including a 2-page (max) description of why you are an ideal candidate and what you would bring to the role.
  • A current curriculum vitae.
  • Names and contacts (telephone, fax, and e-mail addresses) of three professional referees who are familiar with your qualifications and work experience. Your nominated referees ideally should have persons from each of the following category: direct supervisor, internal peer and/or direct report.
Screening will start immediately, and will continue until the position is filled. Only shortlisted candidates will be contacted.

 Link to Appy