Vacante: Gerente: Comité Estatal de Sanidad Acuícola del Estado de Morelos A.C

El Comité Estatal de Sanidad Acuícola del Estado de Morelos, A.C. Organismo Auxiliar (OA) del SENASICA, en Coordinación con la Unidad Responsable y la Representación Estatal del SENASICA, emite la presente:

CONVOCATORIA

• Nombre del Puesto:  Gerente
• Salario bruto mensual/pago de honorarios por prestación de servicios profesionales por tiempo determinado: $23,000 (veintitrés mil pesos 00/100 m.n.*)
• Número de vacantes: 1
• Adcripción del puesto: Comité Estatal de Sanidad Acuícola del Estado de Morelos, A.C.
• Sede: Zacatepec Morelos

Facultades, Atribuciones y Obligaciones:

• Planear estrategias que coadyuven a la conservación y mejora de los estatutos fitozoosanitarios, acuícolas y pesqueros,
• Promover y asesorar a los Directivos en la operación del OA en la Entidad, conforme a la normativa establecida para poder funcionar (procesos de reestructuración) y para mantener su vigencia,
• Mantener la coordinación y comunicación constante con el Gobierno del Estado y el SENASICA, con el objeto de dar cumplimiento a la normativa aplicable a los programas y a las metas convenidas, así como de los logros que se pretenden alcanzar con los Programas de Trabajo,
• Verificar que los coordinadores de los proyectos, el coordinador administrativo y auxiliares administrativos, elaboren y envien los informes técnicos de los Programas de Trabajo según corresponda; asimismo, que elaboren los informes mensuales de los avances físicos y financieros de los Programas de Trabajo y la evaluación de éstos, al cierre del ejercicio,
• Enviar a la Representación Regional y Estatal los Programas de Trabajo en los tiempos establecidos para su revisión y evaluación oportuna por instancias correspondientes,
• Priorizar la atención de los asuntos relacionados con los Programas de Trabajo operados por el OA,
• Informar de manera general al OA los acuerdos derivados de las reuniones de la Subcomisión,
• Cumplir y dar seguimiento a las disposiciones emitidas por el SENASICA,
• Coordinar, analizar y supervisar la elaboración, ejecución seguimiento y evaluación de las acciones contempladas en los Programas de Trabajo autorizados,
• Supervisar que el personal en el OA cumpla con las atribuciones y sus responsabilidades asignadas,
• Elaborar el informe correspondiente de las supervisiones que realice a los Programas de Trabajo y al OA, así como de las comisiones llevadas a cabo dentro y fuera del estado o país; entregánsolo al Presidente de la mesa directiva del OA,
• Integrar los informes mensuales físicos y financieros, conforme a los Programas de TRabajo autorizados,
• Integrar los informes mensuales que se presentará ante la Comisión o Subcomisión, así como el cierre presupuestal y la evaluación anual corespondiente.
• Vigilar y supervisar que el coordinador administrativo realice la ministración de recursos económicos con oportunidad y en apego a los Programas de Trabajo Autorizados, a efecto de que la adquisición de bienes y servicios sea oportuna para la realiación de las acciones de los Programas de Trabajo.
• Asegurar que los montos salariales, prestaciones y viátios se paguen conforme a lo establecido en los Programas de Trabajo.
• Vigilar el estricto cumplimiento de metas y ejercicio de recursos, con el objetivo de evitar desvios de fondos e incumplimiento de metas
• Vigilar que las acciones y adquisiciones de bienes y servicios por parte del OA cumplan con los procedimientos establecidos,
• Coordinar la detección y mejora de procesos para la implantación de Sistemas de Gestión de Calidad del OA,
• Coordinar las acciones necesarias para llevar a cabo la capacitación del personal técnico administrativo en temas de competencia lanoral que permita el mejor desempeño de los profesionistas adscritos al OA,
• Dar seguimiento a los acuerdos que se generen en las reuniones de ls Subcomisión y verificar su debido cumplimiento,
• Atender las recomendaciones técnicas y administrativas de mejora en apego a la normatividad aplicable, señaladas por la Comisión y/o Subcomisión,
• Participar en el Comité de Adquisiciones,
• Dar las facilidades para que se realicen satisfactoriamente las auditorias, evaluaciones, supervisiones de los Programas de Trabajo y de la operación del OA de la entidad,
• Asumir las responsabilidades del coordinador de proyecto ante la ausencia de este y cuando la operación de un nuevo proyecto lo requiera,
• Participar en eventos de capacitación, debiendo aprobar la evaluación correspondiente, así cokmo reuniones organizadas por el SENASICA y otras instituciones del sector, previa autorización de la Unidad Responsable, dicha participación estará en función de los asuntos para atender inherentes a la operación de los Programas de Trabajo.
• Designar a un responsable de la Gerencia cuando se encuentre de comisión, vacaciones o incapacidad,
• Implementar un calendario de supervisiones con el apoyo de las áreas técnicas y administrativas,
• Proporcionar la capacitación de inducción al personal que ingresa a laborar en el OA,
• Contar con los conocimientos para el manejo de los Sistemas Informáticos que implemente el SENASICA para la operación y seguimiento de los Programas de Trabajo.

Acuicultura: Innovación climática inteligente para alimentar al mundo

El cambio climático amenaza la productividad de la pesca y los medios de subsistencia de muchas comunidades dependientes. Los países productores de pescado de África, Asia y América Latina se enfrentan a desafíos derivados de un clima cambiante, pero África está especialmente en riesgo , ya que catorce de los 20 países más vulnerables del mundo se encuentran en el continente.

Y a medida que crece la demanda de pescado, la fuente más grande de proteína silvestre que queda en el planeta, la piscicultura, conocida como acuicultura, se destaca como una de las diez innovaciones para la acción climática en la agricultura. Para más de tres mil millones de personas, alrededor del 40 por ciento de la población del planeta, los peces representan una quinta parte o más de la ingesta de alimentos de origen animal. El potencial para aumentar la producción acuícola también se considera inmenso, con implicaciones muy positivas para la erradicación de la malnutrición global.

La inversión en acuicultura es una estrategia clave para la adaptación a entornos cambiantes que requiere mucha más atención. La piscicultura proporciona múltiples beneficios a los pequeños productores: una oportunidad para aumentar la capacidad de adaptación a través de un suministro alternativo de pescado a las pesquerías silvestres agotadas; un alimento de origen animal rico en nutrientes y ampliamente aceptado para el consumo y las ventas familiares; una fuente diversificada de ingresos agrícolas y alimentos que aumenta la resiliencia frente a las crisis; y reservorios de agua de cultivo que protegen contra la sequía, mientras que ofrecen varios servicios tanto para la agricultura como para la ganadería. Los peces en estanques también pueden actuar como "capital" para las familias de pequeños agricultores que pueden utilizarse como alimento o efectivo.

Más allá de contribuir a la capacidad de adaptación, la acuicultura ofrece oportunidades que responden al imperativo global de mitigar los impactos de los sistemas de producción de alimentos. La acuicultura puede ser un sistema de producción de alimentos altamente eficiente, con ominivoros y peces herbívoros como las tilapias y las carpas que convierten la alimentación en masa corporal de manera altamente eficiente. En segundo lugar, la piscicultura marina y estuarina no está limitada por los desafíos que enfrentan otros sistemas de producción de alimentos terrestres que enfrentan la competencia por la escasez de tierra y agua dulce. En los deltas tropicales afectados por la intrusión salina y el clima extremo, como en Bangladesh , los estanques de peces también proporcionan alternativas de ingresos y producción de alimentos en áreas cada vez menos aptas para cultivos agrícolas y ganaderos, y ayudan a las comunidades a enfrentar los desastres naturales.

World Fish y el Programa de Investigación del CGIAR sobre Pescado sistemas agroalimentarios (FISH) están trabajando con CCAFS y socios para desarrollar innovaciones en las tecnologías y sistemas de gestión para la acuicultura y la pesca que incrementarán la capacidad de adaptación a escala, y para probar y difundir el clima la producción de peces inteligentes sistemas que mitigan las emisiones de gases de efecto invernadero (GEI), mejoran la resiliencia y mejoran la seguridad alimentaria y nutricional para los pobres. Ampliar varias soluciones prometedoras requiere movilizar nuevas inversiones y políticas, desarrollo institucional y personas capacitadas que puedan permitir el crecimiento sostenible de la piscicultura, al tiempo que se manejan los riesgos derivados de las demandas que la acuicultura puede generar sobre los recursos y el medio ambiente.

Entre las soluciones tecnológicas se encuentran la cría de peces y la tecnología de incubación, los sistemas de control de enfermedades, las nuevas fuentes de alimentación sostenibles y los sistemas de producción sensibles a la nutrición, de bajo costo y de bajo impacto ambiental. También se pueden aprovechar las últimas tecnologías de comunicación de la información (TIC), incluida la tecnología de mapas y satélites, la modelización ecológica, los sistemas móviles y los datos abiertos. La habilitación de los servicios locales y el uso de técnicas móviles de transferencia de conocimiento son prometedores para aumentar el acceso y el alcance de la información técnica, las finanzas y el conocimiento del mercado.

El programa de FISH se ha dirigido a una ambiciosa reducción del 20% en las emisiones de gases de efecto invernadero, aumento del 10% en agua y la eficiencia del uso de nutrientes en casi 5 millones de toneladas métricas de producción anual de peces de cultivo para el año 2022. Sin embargo, la transformación de la acuicultura en el más eficiente productor de alimentos nutritivos de origen animal puede ir más allá. FISH continuará su colaboración con otros centros del CGIAR y programas de investigación, tales como CCAFS , los gobiernos socios, instituciones de investigación, ONG y el sector privado para desarrollar estrategias de mitigación y adaptación al cambio climático y la construcción de sistemas de producción de alimentos más resistentes.

 Autor:

Dr. Michael Phillips

Michael Phillips es Director de Acuicultura y Ciencias de la Pesca en WorldFish. Reconocido como un líder mundial en investigación acuícola, Michael se unió a WorldFish en 2008, donde desde entonces ha desarrollado una amplia cartera de investigación sobre acuicultura sostenible. Anteriormente, se desempeñó como Gerente de Programas en la Red de Centros de Acuicultura en Asia-Pacífico (NACA) donde dirigió los programas de investigación y desarrollo de acuicultura de la organización. Michael tiene un Ph.D. en Acuicultura y Comportamiento de los peces de la Universidad de Stirling y una Licenciatura en Ciencias Biológicas de la Universidad de Lancaster.

 

Fuente: http://blog.worldfishcenter.org/2017/11/aquaculture-a-climate-smart-innovation-to-feed-the-world/ 

Convocatoria Tesis de Licenciatura, Maestría y Doctorado. Laboratorio Hospedero-Parásito INECOL

El Laboratorio Hospedero-Parásito en el Instituto de Ecología AC.Convoca:A estudiantes y profesional interesados en realizar Tesis de Licenciatura, Maestría y Doctorado en las áreas de Biodiversidad, Evolución y Sistemática con interés en estudios a nivel molecular, individuos, poblaciones y comunidades, incluyendo microorganismos (helmintos parásitos), con enfoques en investigación básica o aplicada.
Se desarrollarán estudios sobre Sistemática, Taxonomía integrativa, Delimitación de Especies, Ecología y Coevolución entre parásitos del Género Gyrodactylus y sus hospederos, aunque los mismos temas estan disponibles para otros grupos de helmintos parásitos.
El programa de Maestría en Ciencias cuenta con el reconocimiento de "Competencia Internacional" en el Programa Nacional de Posgrados de Calidad (PNPC) del Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACYT), y el programa de Doctorado es reconocido como "Consolidado". Estos reconocimientos facilitan la gestión de becas de estudios para quienes son aceptados en los programas de posgrado del Inecol.
Para mas información ponerse en contacto con: 
Dr. Carlos Daniel Pinacho Pinacho
Investigador cátedras CONACYT, INECOL, AC.
Lab. Interacción Hospedero-Parásito
Campus I, Edificio, C, Primera Planta
Xalapa, Veracruz 91070, México
Email: carlos.pinacho@inecol.mx; cpinacho@conacyt.mx; danyboy_jd26@hotmail.com
Tel: 52 2288421800 ext 3033 y 3034
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VIDEO: Desempeño productivo y bacterias patógenas del caracol "Tegogolo" cultivado en Biofloc. LAQUA17

Amigos de REMA, les compartimos la siguiente presentación impartida por el Biol. Miguel Mejia Ramirez, del Programa de Maestría en Ciencias en Acuacultura del ITBOCA, Ver. cuyo titulo es, "Desempeño productivo y bacterias patógenas del caracol dulceacuícola Pomacea patula catemacensis cultivado en Biofloc. Cabe mencionar que esta ponencia forma parte del Capitulo Latinoamericano "LAQUA17" de la Sociedad Mundial de Acuicultura (WAS) realizado en Mazatlán Sinaloa, México..
Estamos seguros que les agradará.
Cualquier información al respecto pueden contactar al ponene al siguiente correo:
miguelmejiaramirez29@gmail.com
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¿Reemplazo del 100% de Harina de Pescado? Nuevo pienso de proteína de soya para acuicultura

GUAYAQUIL, Ecuador - Midwest Ag Enterprises, (MWA), una empresa estadounidense de ingredientes para piensos, lanzó recientemente un nuevo ingrediente avanzado de proteína de soya, que según afirma puede reemplazar hasta el 100% de la harina de pescado durante algunas etapas de engorde de peces y camarones marinos. acuicultura.

La firma se ha asociado con XPAND-AG de México, una empresa de distribución de ingredientes para piensos, para vender estos productos en América Latina y el Caribe.

Fundador y director general Francisco de la Torre, es mexicano-estadounidense con diez años de experiencia como director regional para el Consejo de exportación de soya de los EE. UU., Puesto que dejó el año pasado para lanzar XPAND-AG.

Francisco de la Torre, presidente y director general de Xpand Ag

Entrevistado en Guayaquil en septiembre, de la Torre dijo que mientras trabajaba con exportaciones de soya, dedicó mucho tiempo al desarrollo de productos para reemplazar la harina de pescado. Ese impulso, compartido por muchos en el sector, se considera clave para todos los productores de alimentos balanceados y acuicultores que intentan hacer que la industria de la acuicultura sea más sostenible.

Alimentación de soya

La producción de soya y la demanda mundial han crecido dramáticamente desde 1991, en un 160%, más que cualquier otro cultivo, explicó De la Torre. La producción de maíz aumentó en un 90% y el trigo en un 26% durante el mismo período.

Los agricultores asiáticos han estado utilizando una cantidad cada vez mayor de soya en alimentos acuícolas, mientras que muchos programas de certificación de terceros requieren una disminución en el uso de harina de pescado para aumentar las calificaciones de sostenibilidad.

La soya es rica en aminoácidos, a excepción de la metionina, por lo que al complementar la alimentación de la soja con metionina, los peces cultivados pueden recibir perfiles de aminoácidos similares a la proteína animal y la taurina, dijo de la Torre.

La soya se ha convertido en una fuente muy importante de proteína y energía en la producción animal y el consumo humano. En este contexto, la proteína vegetal se ha usado mucho en la producción animal, particularmente para los sectores avícola y porcino. Ahora se está volviendo más relevante en la acuicultura, según de la Torre.

"Es significativo; es tremendo", dijo.

Entonces, todo el mundo está buscando fuentes alternativas de proteínas para la producción acuícola, agregó.

"Lo hemos hecho a lo largo de los años: el Consejo de exportación de soja de EE. UU. Ha trabajado mucho en la investigación para desarrollar nuevos productos proteínicos a partir de harina de soya, eliminar carbohidratos y concentrarse en proteínas para desarrollar productos que puedan reemplazar la harina de pescado y otras proteínas animales para peces marinos o camarones ", dijo de la Torre.

Pero "muchas personas en la industria", particularmente los productores de alimentos, siempre pensaron que no era posible reemplazar completamente la harina de pescado.

"Hemos demostrado que la teoría es incorrecta, desarrollando este producto", dijo.

De la Torre dijo que los esfuerzos de investigación de la compañía fueron recompensados.

"Así que desde todos estos años promoviendo el uso de proteínas de soya en la acuicultura, hemos desarrollado algunos productos que ahora ofrecemos en el mercado. Algunos de ellos son concentrados de proteína de soya y una combinación de proteínas de soya y maíz que pueden reemplazar a la mayoría, si no todo, de la harina de pescado en las dietas para las especies acuícolas ", dijo de la Torre.

"NutriVance es un producto avanzado de proteína de soja con 65% de proteína de soja (en base a alimento), que es aproximadamente la misma cantidad que tiene harina de pescado", dijo sobre el nuevo producto de su empresa para la industria de la acuicultura.

NutriVance

MWA y XPAND-AG, que lanzaron su nuevo ingrediente para la acuicultura hace unos seis meses, actualmente están hablando con diferentes proveedores de alimentos, como Biomar o Alimentsa, para utilizar sus productos en América Latina.

La gente todavía piensa que puedes reemplazar hasta una cantidad limitada de harina de pescado para mantener la misma eficiencia de crecimiento, pero la investigación muestra que puedes reemplazar casi toda la harina de pescado, al menos en ciertas etapas de crecimiento, principalmente en las últimas etapas de engorde. de la Torre señaló.

"Tendrás que dejar algo de harina de pescado en la dieta y, en particular, aceite de pescado durante seis a ocho semanas en la nutrición de algunas especies, en el caso del salmón, por ejemplo. Pero hemos desarrollado algunas dietas, como para la cobia o pargo rojo u otras especies de peces marinos de importancia comercial, sin harina de pescado o quizás solo 2-3% como un atrayente y es principalmente una cuestión de convencer al productor [para probarlo] porque les gusta tener algo de harina de pescado en el alimento ," él dijo.

Todavía hay algo de trabajo por hacer, para comprender mejor los requerimientos nutricionales de algunas de esas especies de peces marinos, señaló de la Torre.
Competitividad de precios

Si bien hay una combinación de recursos vegetales que se pueden utilizar para reemplazar casi el 100% de la harina de pescado en las dietas de peces marinos, los precios tienen que ser competitivos, dijo de la Torre.

"Los productores acuícolas luchan por encontrar un producto confiable. Hay muchos tipos diferentes de harina de pescado y mucha gente tiende a comprar uno barato y no siempre es la mejor opción. Las harinas también tienen la desventaja de la fluctuación de los precios durante todo un año. Una de las ventajas de las proteínas de soja es que tiene precios y calidad muy estables, a un precio de $ 900 a $ 1,400 por tonelada métrica según el producto. Por lo tanto, el precio varía, pero en promedio es muy competitivo, alrededor de $ 1.200 / t ", dijo la Torre, señalando que era más rentable que la harina de pescado, así como una fuente de proteína más sostenible.
Otros productos de soja, productos alternativos de alimentación

La cantidad de alimento a base de soja utilizado en las Américas está aumentando.

La industria del salmón en Chile y Noruega usa bastante concentrados de harina de soya y proteína de soya. En Chile, los productores de salmón ya están utilizando unas 200.000 toneladas de concentrados de proteína de soja en alimentos acuícolas. En Noruega, la industria del salmón ha reemplazado hasta dos tercios de la harina de pescado en formulaciones con proteínas vegetales, principalmente proteínas de soya, señaló De la Torre.

Agregó que los alimentos a base de soya están siendo ampliamente utilizados y aumentando también en la cría de camarones.

Según De la Torre, la demanda de concentrado de proteína de soya, o proteínas equivalentes de soya avanzada, alcanzará los 3 millones de toneladas métricas para 2020, el doble del nivel de 2015.

El mercado de soya sigue siendo competitivo.

"Estamos fabricando nuestros productos en los EE. UU. Y hay una empresa en China y dos en Brasil que producen concentrado de proteína de soya y otra empresa en los EE. UU. Y Europa está comercializando un producto de proteína de soya fermentada, un producto de menor proteína pero también muy importante en la industria ", dijo de la Torre.

"También hay algunos concentrados de proteína de maíz disponibles, Cargill está ofreciendo uno y tiene alrededor del 75% de proteína", agregó, y señaló que los concentrados de soja y maíz se complementan entre sí en términos de contenido de aminoácidos.

Con la excepción de la taurina, que es necesaria para los peces marinos, todos los aminoácidos esenciales están cubiertos con proteínas de soja y maíz combinadas, dijo.

Mientras tanto, otros productos, como subproductos animales como harina de ave o harina de plumas, así como fuentes de proteínas recientemente desarrolladas, como proteínas de insectos, etc., también se utilizan cada vez más en la acuicultura utilizada como alimento acuícola.

Contacta al autor matilde.mereghetti@undercurrentnews.com

Fuente: https://www.undercurrentnews.com/2017/11/07/soy-visionary-enters-the-aquaculture-market-with-new-protein-feed/
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Mantis shrimp brain contains memory and learning centers found only in insects

With exceptionally keen vision and the fastest strike in the animal kingdom, mantis shrimps are formidable predators of coral reefs around the world.

Taking a close look at the neural systems of mantis shrimp, top arthropod predators of the coral reef, researchers led by Nick Strausfeld at the University of Arizona and Gabriella Wolff, now at the University of Washington, discovered brain structures that -- according to textbook wisdom -- shouldn't be there.

Known as mushroom bodies, these structures, which play a key role in forming memories and learning, had only been found in insects -- until now. The findings appear to question the most commonly held scenario retracing how brain structures evolved in arthropods.

Since it has been universally accepted that insects evolved from crustaceans, and mushroom bodies are exclusive to insects (or so it seemed), most biologists agree that these unique brain structures evolved after the insect lineage split off from the crustacean lineage.

The implications of the study, which is published in the open-access journal eLIFE, point to one of two possible scenarios, both equally likely to stir up a buzz in the scientific community. According to Strausfeld, a Regents' Professor in UA's Department of Neuroscience and the senior author on the paper, one interpretation suggests that mushroom bodies are much more ancient than scientists realized and were lost in almost all crustaceans except mantis shrimp, a group known as stomatopods that are the sister group of crustaceans such as shrimp, lobster and crabs. In the other scenario, mushroom bodies evolved independently in stomatopods and are analogous to their counterparts in insects, through a process known as convergent evolution.

Comprising more than 4 million species, arthropods are the largest and most diverse group of animals, including crustaceans, insects and spiders. All arthropods are thought to descend from a common ancestor, most likely a creature that inhabited the ocean floor more than 550 million years ago. The exact branching of the arthropod family tree at that early time remains murky, a sketchy picture veiled by the layers of deep time and gaps in the fossil record.

By visualizing cells and neural connections in the brains of mantis shrimp, the authors of the study show that among crustaceans, only mantis shrimp possess true mushroom bodies. Intriguingly, though, they also found some attributes of these iconic structures in close relatives of the mantis shrimp: cleaner shrimp, pistol shrimp and land-living hermit crabs.

This may not be a coincidence, the authors suggest, arguing that among crustaceans, mantis shrimp and their relatives are the only known group that depends on memory of exact locations. It may therefore not be a coincidence that precisely those taxa have retained mushroom bodies because "one proposed driver of the evolution of large mushroom bodies is the requirement to recall the exact locations and properties of places from which to obtain food," as the authors write.

"In insects, mushroom bodies are necessary for learning and memory," Strausfeld says. "We showed earlier that in cockroaches they are necessary for memorizing place. This may be true of most insects. To find this structure in a crustacean is really exciting, because it suggests that it may have arisen in deep time: an ancient center, retained for over half a billion years, to perform this function."

Using a technique known as immunohistochemistry, Wolff and Strausfeld first prepared very thin sections of mantis shrimp brain tissue and applied antibodies that specifically detect certain proteins known to play important roles in learning and memory. Because these antibodies are coupled to fluorescent markers, researchers can trace the exact locations of these proteins as they outline the anatomical architecture of the nervous system.

"When we study the sections stained for learning and memory proteins under the microscope, the characteristic mushroom body lobes that typify insect mushroom bodies light up very intensively," Strausfeld says.

The team is confident that the structures it identified are indeed mushroom bodies. Whereas in the past just three neuroanatomical characters were routinely used to identify these hallmark structures in insect brains, the team expanded this suite of characters to 14 and, according to Strausfeld, "to our delight, as do insects, mantis shrimp reveal every one of them."

The study's authors acknowledge that while intriguing, their findings provide no definitive conclusion to exactly how and when mushroom bodies evolved. The hypothesis that identical centers of such stunning complexity have evolved convergently in stomatopods and insects is just as fascinating as the alternative -- that of mushroom bodies evolving early in the evolution of all arthropods. Strausfeld and his co-authors are not betting on one as more likely than the other.

"We can't rule out convergence," says Wolff, "because it is possible for complex structures to evolve multiple times, although it is not the most probable scenario."

As top predators that use their formidable vision to stalk and hunt prey over considerable distances, mantis shrimp have to evaluate and remember complex features of their environment, the authors note. Similarly, cleaner shrimp, pistol shrimp and land-living hermit crabs rely on advanced spatial and temporal memory skills not shared by other crustacean species, which may have lost their mushroom bodies over the course of evolution.

In previous studies, Wolff and Strausfeld discovered structures resembling mushroom bodies in taxa that evolved before crustaceans and insects, such as centipedes, spiders, even flatworms. Says Wolff: "I think it is most likely that these structures did exist in the last common ancestor of arthropods, and the species that don't have them have secondarily lost them."

The authors hope that studying mushroom body transcriptomes, the patterns of gene expression characterizing their participating neurons, will serve as the ultimate arbiter.

"The question we ultimately want to answer is: What was the earliest brain?" Strausfeld says. "Our research gives us an insight into an ancient brain structure. The earliest brain was not simply defined as the anterior end of the nervous system, but something more elaborate. Fossilized tracks made over 520 million years ago show us that even the earliest brains could make a decision of what to do next and where to return, and those decisions might very well have been informed not simply by immediate sensory information but also by recall."

Fuente: Science Daily

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Patógenos de Pescados y Mariscos e Información de Resistencia Antimicrobiana. Una Revisión

Tendencias mundiales en el consumo de mariscos

La mayoría de los pescados y mariscos son una buena fuente de proteínas, ácidos grasos omega-3 de cadena larga, vitamina D, selenio y yodo . El consumo de productos del mar tiene importantes beneficios para la salud, incluyendo el desarrollo neural, visual y cognitivo durante la gestación y la infancia y minimiza el riesgo de enfermedades cardiovasculares. La Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentación (FAO) informó que el suministro mundial per cápita aumentó de 9,9 kg en 1960 a 14,4 Kg en 1990, 19,7 Kg en 2013 y más de 20 kg en 2014 (FAO, 2016). El consumo de mariscos también ha aumentado por país; China per cápita ha aumentado de 14,4 Kg en 1993 a 37,9 en 2013. Otros países del Asia oriental per cápita también han aumentado de 10,8 Kg a 39,2 Kg en 2013. El promedio continental de África aumentó a 10 Kg, América del Norte incluyendo EE.UU. a 21,4 Kg, Europa a 22,2 Kg y Oceanía a 24,8 Kg (FAO, 2016). El consumo de productos pesqueros ha aumentado en los Estados Unidos durante las últimas décadas, con un consumo que creció en promedio de 3,5 Kg en 1980 a 5,6 Kg en 2006. En 2013 disminuyó a 4,9 Kg (USDA, 2015), que era aún más que la media de 1980. Teniendo en cuenta el crecimiento de la población y el aumento del consumo de pescado por habitante, el suministro bruto de pescados y mariscos de los Estados Unidos ha crecido más de 70% desde 1980, hasta los 2,2 millones de Kg en 2009. Las importaciones de productos pesqueros aumentaron significativamente desde el 50% del consumo bruto de alimentos marinos en 1980 a más del 91% en los años actuales para satisfacer el déficit de la producción nacional. Recientemente, casi el 50% de las importaciones de pescados y mariscos de Estados Unidos se producen por la acuicultura, y un 75% de importaciones brutas para los alimentos marinos congelados.

La pesca y la acuicultura proporcionaron una fuente de ingresos para aproximadamente 56,6 millones de personas en todo el mundo en 2014 ( FAO, 2016). Su participación es a tiempo parcial, pequeñas, intermedias o operaciones de producción a gran escala. Ochenta y cuatro por ciento de estas poblaciones son de Asia, 10% de África, 4% de América Latina y el Caribe y el 2% restante se distribuye en todo el mundo. O bien trabajan en la captura silvestre o la acuicultura. La FAO introdujo diferentes códigos para manejar tanto la captura silvestre como la acuicultura ( FAO, 2016 ).

Desde los años 50s, la resistencia a los antimicrobianos ha sido reconocida como un peligro para la salud pública en todo el mundo, que se ha transportado hasta el nuevo milenio ( CDC, 2010b ). Los antimicrobianos aprobados se usan para especies marinas como terapéuticos y profilácticos. Como la críanza en acuicultura es intensiva, todos los antimicrobianos son en masa. Los residuos de los antimicrobianos no utilizados precipitan y contaminan el ambiente acuático y ejercen un efecto perjudicial sobre la microbiota y las especies animales en el tiempo. El uso de antimicrobianos inseguros o no aprobados (por ejemplo, cloranfenicol, nitrofurano, etc.) pueden tener un efecto nocivo sobre la salud humana. Algunos antimicrobianos como los nitrofuranos y las fluroquinolonas pueden resultar en resistencia antimicrobiana, mientras que otros como el violeta de genciana y los nitrofuranos pueden ser cancerígenos( FDA, 2015 ). El uso excesivo y el uso indebido de antibióticos en la acuicultura pueden aumentar la prevalencia de resistencia a antibióticos, de patógenos zoonóticos en una población acuática.

Vacante: Profesional de Campo. CAHSAC Hidalgo Octubre

A todos los interesados que aspiren a ocupar el puesto de Profesional de Campo en el Comité Acuícola Hidalguense de Sanidad A.C, en lo sucesivo, "El Comité" a que participen en el concurso que se realizará bajo las siguientes bases.

Vacante: Auxiliar en SRRC, CAHSAC, Hidalgo. Octubre

A todos los interesados que aspiren a ocupar el puesto de Auxiliar en Sistemas de Reducción de Riesgos de Contaminación de Inocuidad Acuícola en el Comité Acuícola Hidalguense de Sanidad A.C, en lo sucesivo, "El Comité" a que participen en el concurso que se realizará bajo las siguientes bases.

Vacante. Profesional de Proyecto. Colima.

CONVOCATORIA para concursar el puesto de PROFESIONAL DE PROYECTO, ( en Inocuidad Acuícola y Pesquera.)

Partida presupuestal mensual: $ 15,000.00 Pesos brutos.

Modalidad contratación: Honorarios.

Titulado(a): Biología, Ingeniería en Acuacultura o Pesca, Oceanologia, Medicina Veterinaria o afines.

Recepción de documentos: A partir de la firma de la convocatoria hasta el 25 de Octubre 2017.

Fecha de aplicación de examen: Jueves 26 de Octubre de 2017

Inicio de labores: 01 de Noviembre del 2017

Mas información: Oficinas del CESACOL, teléfono 312 690 5306
o en la dirección de la SAGARPA, Colima, telefono 312 31 61630 Ext. 65247 y 65248.

PARA SOLICITAR LA CONVOCATORIA EN SU TOTALIDAD FAVOR DE MANDAR LA SOLICITUD AL SIGUIENTE CORREO: lae.andreacerrillos@cesacol.org

 

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POSTDOCTORAL FELLOW - EVOLUTIONARY GENOMICS OF FISHES

POSTDOCTORAL FELLOW - EVOLUTIONARY GENOMICS OF FISHES 

The Dowling lab in the Department of Biological Sciences at Wayne State University invites applications for a Postdoctoral Fellow. The individual will assist with multiple aspects of research focused on evolution and conservation of fish biodiversity, with focus on species from the southwestern United States. Applicants are expected to have a Ph.D degree in biology or a related field, with bioinformatic and laboratory experience required. The principal duties will be the collection and analysis of genomic data and writing reports and manuscripts. 

Applicants should be proficient with basic molecular procedures (DNA/RNA extraction, PCR, electrophoresis, sequencing) and have experience with command line data analysis (e.g., R or Python). Preferred qualifications include experience with shell scripting (Unix/Linux systems), and preparation of RAD-seq or other NextGen sequencing libraries. Salary will be commensurate with training and experience. 

Additional information on the position and instructions for application are provided at the following web address: http://bit.ly/1K0QAMF Posting is job number 043026 under Research Assistants/Associates. If you have any questions please email Tom Dowling (thomas.dowling@wayne.edu). Thomas Dowling Department of Biological Sciences 5047 Gullen Mall Wayne State University Detroit MI 48202 313-577-3020 Thomas Dowling 

 LINK ORIGINAL

A traves de: EVOLDIR 

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Nuevo Dominio .ORG

Amigos de REMA, les informamos que desde ayer miércoles 4 de Octubre del 2017 hemos mudado la página a un dominio propio. Ahora la dirección es http://www.remacuicultura.org/

Debido a estos cambios ha cambiado la configuración de privacidad del sitio, hemos dejado de ser https pero no se preocupen ya que en nuestra página nunca pedimos información confidencial como passwords o nips de tarjetas de crédito, así que con toda confianza puede acceder al sitio.

Lo antes que podamos vamos a adquirir un certificado SSL para bridarle mayor seguridad tanto al usuario como al propio sitio.

De antemano agradecemos su comprensión por este pequeño cambio pero todo es en busca de una mejora continua.

Saludos cordiales

Darío G.

Vacante: Profesional de Campo. CAHSAC Hidalgo

A todos los interesados que aspiren a ocupar el puesto de Profesional de Campo en el Comité Acuícola Hidalguense de Sanidad A.C, en lo sucesivo, "El Comité" a que participen en el concurso que se realizará bajo las siguientes bases.

Vacante: Auxiliar en SRRC. CESAY. Yucatán

El Presidente del Consejo Directivo del Comité Estatal de Sanidad Acuícola de Yucatán A.C. como Organismo Auxiliar de SENASICA, en Coordinación con la Delegación de la SAGARPA en la Entidad y el Gobierno del Estado emiten la presente:

CONVOCATORIA 

A todos los interesados que aspiren a ocupar el puesto de Auxiliar de Campo del Comité Estatal de Sanidad Acuícola de Yucatán A.C., para que participen en el concurso que se realizará bajo las siguientes bases:

#Vacante: Profesional de Campo. CAHSAC Hidalgo.

A todos los interesados que aspiren a ocupar el puesto de Profesional de Campo en el Comité Acuícola Hidalguense de Sanidad A.C, en lo sucesivo, "El Comité" a que participen en el concurso que se realizará bajo las siguientes bases.

Virus de la Mionecrosis Infecciosa del Camarón. Un alarmante patógeno viral de camarones Peneidos

El cultivo del camarón blanco, Litopenaeus vannamei, ha influido positivamente en el escenario mundial de producción y exportación de camarón. La producción mundial de camarón de cultivo ha aumentado de 3,4 millones de toneladas en 2013 a 3,6 millones de toneladas en 2014 (Aquaculture Culture Asia-Pacific Magazine). Los productores de Vietnam, Indonesia e India están pasando de la cría de camarón tigre negro al cultivo de L. vannamei . Como resultado, la producción de L. vannamei en Asia aumentó de 2,12 millones de toneladas en 2013 a 2,37 millones detoneladas en 2014 ( FAO, Glob fish, shrimp May-2015 ). El cultivo de monodon fue verdaderamente una víctima de muchos caos como como la Enfermedad de la Mancha Blanca (White Spot Disease-WSD), Síndrome del Caparazón blando (Loose Shell Syndrome LSS) y Síndrome de Crecimiento Lento de Monodon (Slow Growth Syndrome MSGS). Hoy en día el mundo se ha trasladado a L. vannamei debido a su alta productividad, participación de bajo costo y disponibilidad de semillas Libre de Patógenos Específicos (SPF). La enorme tasa de producción de L. vannamei ha impulsado la exportación de la India en el año fiscal 2013-2014 en 1,34,372 toneladas (USD 1,47 mil millones) en comparación con 69,565 toneladas (USD 540,8 millones) durante el año fiscal anterior (Shrimp, 2014). Pero ahora L. vannamei no es más resistente a enfermedades como Virus del Síndrome del Taura (TSV), Enfermedad de la Cabeza Amarilla (YHV Tipo-1), Virus de la Necrosis Hipodérmica y Hematopoyética Infecciosa (IHHNV) y el Síndrome de Mortalidad Temprana (EMS).

La disponibilidad de las poblaciones de SPF de L. vannamei para WSSV ha reducido los brotes de WSSV. Pero aún así, está sufriendo de nuevas enfermedades emergentes como EMS, IMNV y la enfermedad de la deformidad del segmento abdominal (ASDD) ( Sakaew et al., 2008 ).
En este artículo se presenta el estado actual de investigación para el Virus de la Mionecrosis Infecciosa (IMNV) que es una enfermedad viral emergente de L. vannamei.

El virus de la mionecrosis infecciosa es un virus emergente que ha afectado el cultivo de Vannamei de países como el nordeste de Brasil (Andrade et al., 2007) y en la Isla de Java Oriental (Senapin et al., 2007), así como en otros países de Asia Sudoriental. La enfermedad no es amenazante como otras enfermedades virales, como WSSV, YHV, etc., pero puede haber una alta mortalidad debido a condiciones ambientales adversas. De acuerdo a resultados de laboratorio, no hubo mortalidad hasta 9 a 13 días después de la exposición al IMNV ( Tang et al., 2005 ), mientras que puede ocurrir mortalidad significante dentro de 1 a 3 días en los bioensayos con TSV, YHV o WSSV ( Lu et al , 1995, Overstreet et al., 1997, Tang y Lightner, 2000 ). Aunque la progresión de la enfermedad es más lenta en comparación con otras enfermedades virales. Puede haber una pérdida económica significativa debido a mortalidades persistentes y al aumento de la eficiencia de la conversión alimenticia ( Lightner et al., 2004b). Se ha reportado mortalidad acumulada hasta el 80% en Brasil ( Poulos et al., 2006 ). Hay una reducción en el valor de mercado de los supervivientes con músculo necrótico. La enfermedad se informó por primera vez en las zonas de cultivo de camarón de Brasil en 2004 y en 2006, esta se extendió a Indonesia, lo cual se debe al transporte inadecuado de animales vivos. La enfermedad fue responsable de pérdidas económicas por valor de aproximadamente US $ 20 millones (OIE, Organización Mundial de Sanidad Animal, 2009) en 2003. Por lo tanto, para desarrollar conciencia y medidas de control necesarias para la aparición de IMNV, fue enlistada en un reporte por la OIE (Organización Internacional de Epizootias) durante 2005.

Virus de la Myonecrosis Infecciosa (IMNV)
El Virus de la Myonecrosis Infecciosa (IMNV, por sus siglas en inglés) es un emergente virus potencial de camarón que causa una pérdida económica considerable en la acuicultura de camarones ( Nunes et al., 2004 ). La enfermedad fue reportada por primera vez en el Estado de Piauí, Nordeste de Brasil, 2002 en el camarón de pie blanco del Pacífico, Litopenaeus vannamei y fue inicialmente nombrada Myonecrosis Idiopática ( Lightner et al., 2004a, b ). Por último, la enfermedad fue renombrada como mionecrosis infecciosa (IMN) y el agente etiológico fue identificado como un virus, denominado Virus de la Mionecrosis Infecciosa (IMNV) ( Poulos et al., 2006; Tang et al., 2008 ). Aparte de L. vannamei naturalmente susceptible , las otras especies que se sabe son experimentalmente susceptibles son Farfantepenaeus subtilis, Penaeus monodon y Litopenaeus stylirostris. (Lightner et al., 2004a, b, Tang et al., 2005, Coelho et al., 2009). El virus infecta todas las etapas de la vida del camarón incluyendo post larvas, juveniles y adultos, pero la mortalidad fue observada en los juveniles y adultos con aspecto cocido (Nunes et al., 2004). El rango de supervivencia reportado durante la infección es de 35 a 55% en camarones de 12 g con una densidad de población de 60 org/m2 y la pérdida económica se estimó en US $ 20 millones en 2003 (Nunes et al., 2004). Hasta la fecha, la enfermedad estaba restrida sólo a Brasil en América del Sur e Indonesia en Asia. (Lightner et al., 2004a, b, Senapin et al., 2007). Las pérdidas causadas por la enfermedad en 2003 solo se estimaron en 20 millones de dólares (OIE, 2007). Los productores de camarón brasileños sufrieron una pérdida económica de 440 millones de dólares como resultado del brote del IMNV a finales de 2005 ( Andrade et al., 2007 ) y, a finales de 2011, Brasil y Indonesia La pérdida fue aumentada a > 1 mil millones de dólares ( Lightner, 2012 ). Los estudios informaron que el virus de la mionecrosis infecciosa puede aparecer como una co-infección con el Noda Virus Macrobrachium rosenbergii (MrNV) y el virus del síndrome de mancha blanca (WSSV) en Litopenaeus vannamei (Senapin et al., 2013; Feijó et al).

Distribución geográfica del virus
El virus fue reportado por primera vez desde el Nordeste de Brasil en Sudamérica en 2002. Hasta 2007, la enfermedad se restringía sólo a Brasil. Pero en 2007, el virus cruzó su frontera y fue reportado por primera vez en Indonesia en un país asiático, donde se vio en las granjas del oeste de Java, Sumatra, Bangka, Borneo del oeste, Sulawesi del sur, Bali, Lombok y Sumbawa en Asia sudoriental (Sutanto, 2011). Tailandia también reclamó la infección con el virus IMN, pero una investigación más profunda reveló que, aparte de Indonesia, no se contagió a ningún otro país asiático. (Senapin et al., 2011). Desde que se informó por primera vez de Brasil, se cree que este virus es de origen sudamericano. La distribución geográfica está restringida. Se cree que la propagación de la enfermedad a nuevos lugares como Indonesia se debe al movimiento transfronterizo ilegal de reproductores infectados o portadores y postlarvas para la acuicultura ( Flegel, 2006, Senapin y otros, 2007, Walker y Mohan, 2009, Walker y Winton, 2010 ). Ya existen rumores sobre la presencia de virus en países asiáticos distintos de Indonesia, India, China, Malasia, Tailandia y Vietnam. Pero el informe de Senapin et al. en 2011, los declara falsos como contaminación o el síndrome de calambres musculares (blanqueamiento del músculo)( Figura1 ).

Figura 1 Distribución geográfica del Virus de la Myonecrosis Infecciosa (IMNV) en el mundo.


Rango del hospedador y cepas de IMNV 
El virus IMN infecta exclusivamente a los camarones Peneidos. Hasta la fecha, no hay ningún informe de cualquier infección entre las poblaciones silvestres (Tang et al., 2005). El virus infecta de forma natural a los camarones blancos del Pacífico, L. vannamei y camarón marrón del sur, Farfantepenaeus subtilis y ha demostrado experimentalmente infectar, Penaeus monodon, y L. stylirostris (Lightner et al., 2004a, Tang et al., 2005; Coelho et al., 2009 ). No ha habido informes de muerte en P. monodon debido a la infección, pero puede ser un portador potencial del virus (Tang et al., 2005 ). Dado que el principal tejido objetivo de la infección por IMNV son los músculos esqueléticos y que no son órganos vitales, la infección no es tan fatal en comparación con otros virulentos virus del camarón como WSSV, YHV y TSV. Además, el daño iniciado a los tejidos musculares puede ser reparado en las primeras etapas de la infección ( Tang et al., 2005 ). Se han realizado estudios para la identificación de vectores o portadores potenciales del IMNV y recientemente, da Silva et al., 2015 reportaron a Artemia franciscana, organismo vivo utilizado en la alimentación, como vector de la infección por IMNV. Sin embargo, no se observó mortalidad masiva del camarón L. vannamei alimentado con A. franciscana infectado. Esto se debe a que podría actúar como una fuente de IMNV en estanques de cultivo de crecimiento ( da Silva et al., 2015 ). Los bivalvos y los gusanos poliquetos también son reportados como positivos a la infección por IMNV desde estanques infectados aunque sin ninguna certeza para confirmar que son verdaderos vectores o portadores. La presencia del virus puede deberse a la ingestión de los tejidos contaminados o al agua de la zona infectada ( Andrade y Lightner, 2009 ). Datos detallados del rango de huésped de IMNV dados como tabla (Tabla 1).


Tabla 1 . Gama del anfitrión de IMNV.

Si. No	Especies susceptibles	Edad notificada de susceptibilidad	Región de estudio	Otras variables (estacionales / de temperatura)	Referencia
1	Litopenaeus vannamei	Subadulto	Estado de Piauí, NE Brasil		Lightner et al., 2004a, 2004b
2	Farfantepenaeus subtilis	Juveniles	Brasil	30 ups Salinidad,  temperatura 27-29 ° C, pH  7,8-7,9, DO 6,4-6,6  ppm	Coelho et al., 2009
3	Litopenaeus stylirostris	Juveniles	Arizona, EE.UU.		Tang et al., 2005
4	Penaeus monodon	Juveniles	Arizona, EE.UU.		Tang et al., 2005
5	Artemiafranciscana(como vector)	Organismo de alimentación viva - nauplii	Brasil	30  ppt de salinidad, 28  ° C de temperatura, densidad de almacenamiento 20 nauplii / ml	Da Silva et al., 2015

Hasta la fecha, se han descrito cuatro cepas de IMNV y nueve cepas parcialmente secuenciadas. La primera cepa (IMNV_Brazil_2006) fue reportada de Brasil en 2006 ( Poulos et al., 2006 ) y la segunda (IMNV_Indonesia_2006) de Indonesia en 2007 ( Senapin et al., 2007 ). El genoma parcial y completo de los aislados de estas cepas está disponible en el banco de genes. La siguiente tabla muestra información actualizada sobre la secuencia del genoma disponible en la base de datos ( Tabla 2 ).


Tabla 2 . Cepas identificadas de IMNV.

Si. No	Nombre de la cepa	GeneBank no	Tipo
1	BZ-03	AY570982.2	Completo
2	ID-EJ-06	EF061744	Completo
3	BZ-04-ZS2011001	KC200075	Parcial
4	BZ-07-1	HM030799	Parcial
5	BZ-07-2	HM357803	Parcial
6	ID-LP-11	KJ636782	Completo
7	ID-EJ-12-1	KJ636783	Completo
8	ID-EJ-12-2	KJ636784	Parcial
9	ID-LP-12-1	KJ636785	Parcial
10	ID-EJ-12-3	KJ636786	Parcial
11	ID-LP-12-2	KJ636787	Parcial
12	ID-BB-12	KJ636788	Parcial
13	BZ-11-UAZ219	KJ636789	Parcial

La secuencia del genoma viral del IMNV aislado de la granja de camarón indonesio muestra 99,6% de similitud con la secuencia brasileña ( Senapin et al., 2007 ). Múltiples alineaciones de la secuencia codificante de la proteína de la cápside viral IMNV brasileña de 372 pb muestra un alto grado de similitud con secuencias de Brasil e Indonesia ( Melo et al., 2014 ). Este análisis sugiere que las cepas de Brasil e Indonesia son genéticamente idénticas y que la cepa indonesia puede provenir de Brasil. Posteriormente, Naim et al. (2015) han determinado y depositado otras dos cepas indonesias IMNV recogidas de la provincia de Lampung en 2011 y la provincia de Java Oriental en 2012. Junto con la secuenciación completa, se intentaron otras 6 secuencias parciales. Sin embargo, reportaron una clara evidencia de diversificación genética entre las cepas brasileñas e indonesias, así como dentro de las cepas indonesias IMNV parcialmente secuenciadas. Comparaciones realizadas entre las cuatro secuencias del genoma completo disponibles, solamente se encontraron un total de 9 aa de sustitución (Naim et al., 2015). De acuerdo con Naim et al. (2015), Coelho-Melo et al. (2014) también confirmaron que la cepa indonesia compartía una alta identidad con la cepa brasileña aislada y caracterizada del estado de Ceará, Brasil. La caracterización de la mayor proteína de la cápside (MCP) del virus reveló que existe una conservación genética entre los aislados virales del estado de Ceará, Brasil (Coelho- Melo et al., 2014). El último análisis filogenético confirmó que los aislados brasileños son más variables que los aislados de Indonesia (Dantas et al., 2015). Estas conclusiones fueron confirmadas por Kibenge y Godoy (2016) construyendo un árbol filogenético no desarraigado basado en la longitud máxima disponible de cada cepa (8 cepas). Los informes analíticos fueron consistentes y confieren a la rama monofilética de cada grupo geográfico (Naim et al., 2015, Dantas et al., 2015, Kibenge y Godoy, 2016).

Basándose en la filogenia de la secuencia de la ARN polimerasa dependiente de ARN (RdRp), es evidente que los Totivirus de los artrópodos son cercanos al clado de Giardiavirus (Oliveira et al., 2014). Sin embargo recientemente Dantas et al. (2016) han informado evidencia suficiente de los Artropodos Totivirus para ser agrupados por separado en el género "Artivirus" dentro de la familia Totiviridae, tal como fue propuesto anteriormente por Zhai et al. (2010).

Transmisión viral

El modo exacto de transmisión del virus IMN no se ha entendido completamente. El comportamiento canibal del camarón infectado puede ser la vía de transmisión horizontal de la enfermedad (Lightner, 2011; Poulos et al., 2006 ). La probabilidad de supervivencia de las partículas virales infecciosas no envueltas es alta en el tracto gastrointestinal de los organismos que se alimentan de los animales infectados, por lo que es probable que se produzca la propagación del virus por ingestión (OIE, 2012). La transmisión a través de los transportistas potenciales como A. fransiscana,  no puede ser eliminado. A pesar de que existen deficiencias en datos específicos sobre los vectores del IMNV (OIE, 2012, da Silva et al., 2015). La probabilidad de transmisión a través del agua y la transmisión vertical desde los reproductores a la progenie no puede ser ignorada. Recientemente, se ha informado de evidencia experimental de transmisión vertical en L. vannamei mediante análisis de PCR en tiempo real de reproductores naturalmente y experimentalmente infectados ( da Silva et al., 2016 ). Basado en el 100% de detección positiva de IMNV en los ovarios y la menor viabilidad de los espermatozoides en los hombres naturalmente infectados, se sugiere que la fuente de transmisión vertical es el origen materno. El virus que pertenece a la familia Totiviridae se transmite a las células no infectadas sólo durante la división celular, esporogénesis en el caso de hongos que infectan virus y fusión celular (Poulos et al., 2006). Sin embargo, el virus IMN y el virus de la miocarditis de Piscine (PMCV) los cuales infectan únicamente el salmón del Atlántico (Salmo salar L.) mostraron una estrategia de transmisión extracelular durante la infección (Haugland et al., 2011). Los estudios generalizan que el virus puede ser transmitido a animales susceptibles a través del modo horizontal vía vectores, la co-habitación a través del agua, el canibalismo y la vía vertical derivada de la madre (Lightner, 2011), da Silva et al ., 2015, da Silva et al., 2016 ).

Diagnóstico de la enfermedad
Signos clínicos

La gravedad de la enfermedad es más frecuente en estadios juveniles y adultos y la mortalidad acumulada en estadios subadultos y adultos oscila entre 40% y 70% (Poulos et al., 2006). Se observó una reducción considerable en el valor de mercado debido a una mortalidad > 40% durante el último ciclo de producción y la mortalidad total aumenta y alcanza hasta el 70% debido a la infección natural en las granjas de acuicultura (Tang et al., 2005). Los camarones gravemente afectados se vuelven moribundos y muestran signos de comportamiento no específicos, como letargo durante o poco después de eventos estresantes tales como compensación, alimentación, cambios repentinos en la temperatura del agua, reducciones repentinas de salinidad del agua. Estos aumentos en el nivel de estrés aumentan la tasa de mortalidad ( Lightner, 2011; Lightner et al., 2004a, b, Nunes et al. 2004; Poulos et al., 2006 ). La temperatura juega un papel crucial en la aparición de la enfermedad y puede comenzar en ambas estaciones. El aumento de la temperatura puede conducir a una alimentación excesiva y por lo tanto la producción de amoniaco por encima del nivel normal. Estas condiciones aumentan los factores de estrés a los camarones y producen elevadas mortalidades. La pérdida de los cultivos generalmente se informa de las granjas cuando el período de cultivo cruza 40 días o más (Flegel et al., 2008; Taukhid y Nur'aini, 2009). Los camarones infectados mostraron menor consumo de alimento y estos reportaron un aumento en la tasa de conversión alimenticia (FCR) de 1,5 a 4,4 en los estanques de cultivo como resultado de que la tasa de supervivencia cayó al 21% (Coelho et al ., 2009, Loy, 2014). La manifestación clínica es prominente en la fase aguda de la infección por IMNV. El músculo esquelético es el sitio primario de la infección, pero también pueden afectar las agallas y el órgano linfoide (Lightner et al., 2004a, b). Hay desde focal hasta extensivas áreas blancas necróticas en músculos estriados (esqueléticos), sobre todo en los segmentos abdominales distales y en la cola. En la fase crónica, las lesiones se acompañan por la licuación de los músculos necróticos. Los músculos y apéndices exhiben una coloración rojiza, dando la apariencia de camarones cocidos (Nunes et al., 2004) Figura 2. La fase aguda del animal infectado exhibe necrosis del músculo coagulante que progresa a necrosis licuefactiva a medida que avanza la enfermedad hasta la fase crónica (Lightner et al., 2004a).

Figura 2 Camarones con IMNV presentan lesiones rojizas sobre el músculo y en su cola 

(Tomado de Engormix. R. Pinheiro Gouveia 2010) 

Histología 
Los métodos convencionales de diagnóstico como la histopatología de los tejidos afectados son una de las mejores maneras de diagnosticar la infección por IMNV en camarones ( Lightner, 1996 ). Los músculos estriados (músculos esqueléticos y menos frecuentemente cardíacos), los tejidos conectivos, los hemocitos y las células del parénquima de los túbulos linfoides son órganos principales en la fase aguda, mientras que la infección se restringe sólo a órganos linfoides en la fase crónica (OIE, 2012; Et al., 2004a, b, Poulos et al., 2006). La infección por IMNV se caracteriza por la presencia de esferoides de órganos linfoides que son 3 a 4 veces más grandes que los túbulos de órganos linfoides normales, los cuerpos de inclusión basófilos oscuros específicos de virus en el miocito, los hemocitos y los tejidos conectivos (Lightner et al., 2004a, B, Poulos et al., 2006 ). Otras manifestaciones que se pueden observar en las secciones teñidas con H&E son necrosis coagulante de músculo estriado, edema, infiltración de hemocitos, fibrosis ( Poulos et al., 2006). El IMNV puede diferenciarse fácilmente del Síndrome del Calambre Muscular de L. vannamei por la presencia de hemocitos infiltrados en el músculo coagulado, que está ausente en el último. ( Senapin et al., 2011 ). El IMNV no replicará en los tejidos entéricos volviendo a los tejidos inadecuados para el diagnóstico (OIE, 2012).

Diagnóstico basado en ácidos nucleicos
La hibridación in situ junto con la sonda marcada con digoxigenina de 993 pb da una señal fuerte con los cuerpos de inclusión presentes en el citoplasma de las células del músculo esquelético infectadas ( Tang et al., 2005 ). Para detectar dsRNA a través de ISH las secciones de tejido se desnaturalizaron a 84°C durante 10 min. Andrade et al. (2008) ha modificado el protocolo ISH descrito por Lightner (1996) para la detección de IMNV en tejido infectado. También ha evaluado el impacto del fijador de Davidson en ISH. Un método rápido y sensible para el diagnóstico definitivo de la enfermedad se desarrolló mediante la RT-PCR (Reacción en cadena de la polimerasa en cadena inversa) por Poulos y Lightner (2006), que tiene un límite de detección de 10 copias del genoma viral. Con el fin de mejorar la sensibilidad de la detección de IMNV Senapin et al. (2007) ha desarrollado un método de detección de RT-PCR anidada, con cebadores específicos para dirigirse a la región RdRp viral en lugar del gen de la cápside dirigido por el kit comercial. Los dos conjuntos de cebadores se diseñaron para amplificar un fragmento interno de 282 pb a partir de los amplicones de 600 pb. Andrade (2007) ha desarrollado una PCR en tiempo real para la detección de IMNV con cebadores y sondas contra una región ORF-1 del genoma viral que es más sensible en comparación con la PCR anidada. Melo et al. (2014) ha desarrollado una técnica de diagnóstico a través de RT-PCR de secuencia de nucleótidos de 372 pb correspondiente a la proteína de la cápside viral. Puthawibool et al. (2009) ha informado de un sistema combinado de RT-LAMP y LFD para la detección de IMNV. El sistema combinado tarda < 75 min con una sensibilidad de detección comparable a la detección anidada por RT-PCR de IMNV. El dispositivo de flujo lateral reduce el tiempo de detección del amplicón y el uso de bromuro de etidio carcinógeno en comparación con la electroforesis. Andrade y Lightner (2009) también han desarrollado el método RT-LAMP-NALF que muestra una sensibilidad equivalente a RT-LAMP (utilizando tres pares de cebadores) y es 100 y 10 veces más sensible que la RT-PCR de un solo paso y RT-LAMP (Dos pares de cebadores), respectivamente. El dispositivo de flujo lateral reduce el tiempo de detección del amplicón y el uso de bromuro de etidio carcinógeno en comparación con la electroforesis. Andrade y Lightner (2009) también han desarrollado el método RT-LAMP-NALF que muestra una sensibilidad equivalente a RT-LAMP (utilizando tres pares de cebadores) y es 100 y 10 veces más sensible que la RT-PCR de un solo paso y RT-LAMP (Dos pares de cebadores), respectivamente. El dispositivo de flujo lateral reduce el tiempo de detección del amplicón y el uso del carcinogénico bromuro de etidio en comparación con la electroforesis. Andrade y Lightner (2009) también han desarrollado el método RT-LAMP-NALF que muestra una sensibilidad equivalente a RT-LAMP (utilizando tres pares de cebadores) y es 100 y 10 veces más sensible que la RT-PCR de un solo paso y RT-LAMP (Dos pares de cebadores), respectivamente.

Diagnóstico basado en anticuerpos 
Con el fin de desarrollar un método de inmunodiagnóstico que es más rápido y más barato en comparación con los métodos moleculares Anticuerpos policlonales se ha desarrollado contra IMNV ( Melo et al., 2011 ). La purificación del virus se realizó mediante un método de centrifugación en gradiente de sacarosa que es diferente de la ultracentrifugación de CsCl realizada por Poulos et al. (2006) . El anticuerpo específico es capaz de detectar IMNV a traves de Western Blot. El desarrollo de anticuerpos monoclonales es necesario para el inmunodiagnóstico de una enfermedad. Existen dos mAbs desarrollados por Kunanopparat et al. (2011) contra la proteína de la cápside de IMNV que están detectando infecciones naturales de IMNV en Litopenaeus vannamei por transferencia de puntos, Western Blot e inmunohistoquímica. Las sensibilidades de detección de los MAb fueron de aproximadamente 6-8 fmol / punto de proteína recombinante purificada. La combinación de los tres MAbs sensibilidad fue aproximadamente 10 veces inferior a la de un paso RT-PCR utilizando la misma muestra, pero estos son específicos para detectar IMNV y no reacciones cruzadas con otros virus y tejidos de camarón. En el mismo año, Seibert et al. (2010) han desarrollado cuatro MAbs que son específicos de IMNV100 kDa proteína de la cápside mayor. Más que los MAbs, las tiras reactivas de diagnóstico rápido inmuno- cromatográficas se han desarrollado para la detección de IMNV ( Chaivisuthangkura et al., 2013, Wangman et al., 2016 ). La sensibilidad del inmunodiagnóstico se ha incrementado conjugando MAbs con la partícula coloidal de oro.  

Respuesta inmune del huésped 
La actividad antiviral de la respuesta inmune de los crustáceos es un nuevo campo de interés. Se necesitan muchos tipos de investigación para comprender la actividad inmune de los crustáceos en detalle. Hasta ahora lo que entendemos que el sistema inmune de los crustáceos significa la actividad de defensa innata del animal. Esto consiste en el sistema inmune humoral y celular. Hay un grupo diverso de receptores del reconocimiento patrón en crustáceos. La respuesta inmune celular consiste en tres clases de hemocitos, incluidas las células hialinas (HC), hemocitos semicranulares (SGHs) y hemocitos granulares (GHs) Lin y Söderhäll (2011). Existe un gran número de péptidos antimicrobianos presentes en crustáceos tales como las peneidinas (Destoumieux et al., 1997), factores anti-lipopolisacáridos (ALF) (Supungul et al.,2004) y crustins (Bartlett et al 2002).

Un estudio del sistema inmune de Vannamei en respuesta a la infección por IMNV ha sido realizado por Costa et al. (2009). Hay una reducción del 30% en el número circulante de hemocitos en camarones fuertemente infectados. La causa de esta reducción aún no está clara, ya que no hay evidencia de infección del tejido hematopoyético por el virus. El porcentaje de hemocitos apoptóticos son además muy reducidos y esta información sugiere que los hemocitos no son el objetivo primario del virus. Animales infectados severamente tienen significativamente menos hemocitos granulares (7%), los cuales pueden ser a causa de la reducción de la actividad profenoloxidasa. Sin embargo, hay un aumento en intermedios reactivos del oxígeno. La hemolinfa de vannamei infectado muestra actividad antimicrobiana contra Micrococcus luteus y Escherichia coli pero no contra Vibrio harveyi marino. El estudio de los parámetros inmunológicos a través de métodos convencionales no es suficiente y necesita investigación a nivel molecular por PCR en tiempo real. El resultado de la investigación de respuesta inmune a través de RT-PCR cuantitativa de L. vannamei co-infectadas con IHHNV y IMNV ha demostrado un nivel aumentado de HSP-70 expresión por la infección por IHHNV en las agallas de los camarones de doble infectados pero no por la infección IMNV (Vieira -Girão et al., 2012). El aumento del nivel de HSP en respuesta a la infección viral demuestra que actúa como un modulador inmune y ayuda a inducir la inmunidad innata en el caso de infección por IMNV. Los niveles de expresión de crustin, penaeidina y lectina tipo C no están influenciados por este tipo de coinfección. También se observaron mortalidades significativas en los camarones co-infectados con IMNV y Vibrio harveyi ( Sukenda et al., 2015 ). La administración de los probióticos SKT-b y los prebióticos oligosacáridos de la batata ( Ipomea batatas L) aumentaron la respuesta inmune de los camarones blancos contra la infección por IMNV ( Septiani, 2011 ). Los resultados similares fueron probados por Oktaviana y Widanarni (2014) administrando el similar simbiótico, Vibrio alginolyticus SKT-b R y los prebióticos de la batata ( I. batatas L) Oligosacarido separado del desempeño de alto crecimiento (Oktaviana and Widanarni, 2014).

Control y prevención de enfermedades 
A diferencia de los peces, en los crustáceos, la vacunación común no funciona porque tienen alguna memoria en su sistema inmunológico. La investigación en el campo de la vacunación contra las enfermedades virales de los crustáceos está orientada principalmente por RNAi. La inmunoestimulación con dsRNA específico de secuencia da protección contra enfermedades virales diana. Hay pocas investigaciones para la protección del IMNV porque la mayoría de las investigaciones se realizaron para la caracterización del IMNV. Sin embargo, por primera vez Loy et al. (2012) ha informado que una sola dosis baja (0,02 mg) de un fragmento de 81 o 153 pb (dsRNA95-475), con secuencia correspondiente a la supuesta proteína de escisión 1 en ORF1 da 100% de protección contra IMNV y fueron resistentes a subsecuentes infecciones sobre 50 días más tarde con una dosis de virus 100 veces mayor. También ha informado de que el dsRNA dirigido a la proteína estructural y RdRp (dsRNA3764-4805 y dsRNA5518-6391, respectivamente) no es capaz de dar una protección satisfactoria a diferencia de WSSV ( Robalino et al., 2004 ) y YHV ( Tirasophon et al., 2005; Yodmuang et al., 2006 ). El modo de vacunación es muy importante. El método común de vacunación del camarón es a través de la inyección intramuscular, pero Sriyotee Loy (2014) ha informado que la vacunación con dsRNA95-475 (Loy et al., 2012) mediante gavage inverso puede provocar una protección estadísticamente significativa (p < 0,05) contra el IMNV.

Es bien sabido que las bacterias y los hongos tienen LPS y β-1,3-glucano en su superficie las cuales son reconocidas como "extrañas" por la respuesta inmune del huésped. Otra forma que ellos utilizan para desencadenar la respuesta inmune del huésped y proporcionar inmunidad no específica. En insectos y crustáceos, el LPS y los β-1,3-glucanos, al unirse a LPS y la proteína de unión a glucano, activan proPO, la cascada de coagulación y los genes para proteínas antibacterianas ( Hoffmann, 1995, Iwanaga et al. Al., 1998 ). Neto y Nunes (2015) han informado que la adición de 1000 mg / kg de β-1,3 / 1,6-glucano que es un polisacárido extraído y purificado de la pared celular de la levadura de panadería Saccharomyces cerevisiae en una dieta para L. Vannamei mejora la supervivencia del camarón cuando está expuesto por vía oral a IMNV sin ningún efecto secundario después de una exposición a largo plazo. El uso de quitosano que es una glucosamina que tiene una estructura química casi similar a β-1,3-glucano en la alimentación con una dosis de tratamiento de 3 ml / kg de alimento activa Prophenoloxidase (ProPO) de L. vannamei ( Nindarwi et al., 2013 ). El análisis de la interacción de proteínas usando el ensayo de dos híbridos de levadura reveló que el receptor Laminin (Lamr) interactuaba específicamente con proteínas cápside/envoltura de los virus ARN IMNV y YHV y la inmunización con la proteína Lamr recombinante expresada en levadura provocó protección contra YHV en condiciones de laboratorio. Por lo tanto, existe una perspectiva futura de usar rLmar como un inmunoestimulante contra IMNV ( Busayarat et al., 2011 ). El uso de quitosano que es una glucosamina que tiene una estructura química casi similar a β-1,3-glucano en la alimentación con una dosis de tratamiento de 3 ml / kg de alimento activa Prophenoloxidase (ProPO) de L. vannamei ( Nindarwi et al., 2013 ). El análisis de la interacción de proteínas usando el ensayo de dos híbridos de levadura reveló que el receptor Laminin (Lamr) interactuaba específicamente con las proteínas de la cápside / envoltura de los virus ARN IMNV y YHV y la inmunización con la proteína Lamr recombinante expresada en levadura provocó protección contra YHV en condiciones de laboratorio. Por lo tanto, existe una perspectiva futura de usar rLmar como un inmunoestimulante contra IMNV ( Busayarat et al., 2011 ).

El control de enfermedades virales básicas y las estrategias preventivas como el uso de animales libres de patógenos específicos (SPF) y específicos resistentes a patógenos (SPR), las medidas de bioseguridad y el proceso de selección genética para las variedades resistentes a enfermedades ( Moss et al . La Universidad de Arizona ha desarrollado un protocolo de detección de laboratorio para la identificación de líneas de L. vannamei resistentes a IMNV y la subsiguiente reproducción de poblaciones de cría resistentes. Ellos han evaluado 21 líneas familiares de L. vannamei durante un mínimo de 20 días y los resultados mostraron una mejora significativa en la tasa de supervivencia del 3,2% en la generación F1 a 55,3% en la generación F7 ( White-Noble et al., 2010 ). Actualmente se está llevando a cabo el proceso de selección selectiva, por lo que estos resultados no han sido publicados en publicaciones revisadas por pares ( Lima et al., 2013 ). Existe una mortalidad del 20% en caso de infección experimental de L. vannamei, pero no se observó mortalidad en L. stylirostris o P. monodon ( Tang et al., 2005 ). Por lo tanto, la repoblación de estanques con variedades resistentes a IMNV como P. monodon y P. stylirostris puede reducir las pérdidas debidas a las mortalidades. Se cree que IMNV se puede transferir verticalmente, y en tal condición es necesaria la desinfección de huevos y larvas. Además, se deben implementar correctamente otras prácticas generales de crianza  como el uso de reproductores libres de patógenos específicos (SPF), medidas de bioseguridad y adecuadas condiciones de cuarentena. 

Conclusión 
La producción de L. vannamei tiene un gran futuro para los productores de camarón, pero el brote de enfermedades infecciosas puede obstaculizar la exportación de los países, así como la situación socioeconómica de los productores y otras partes interesadas. La situación actual del Camarón Tigre Negro no es responsable del simple virus, sino que se debe a múltiples enfermedades virales. La producción de L. vannamei en algunos países como Tailandia ya está afectada por el SME. Por lo tanto, es hora de pensar en todas las enfermedades virales emergentes si son más o menos infecciosas. En este sentido, los procedimientos de diagnósticos desarrollados y el inminente crecimiento de la investigación sobre profilaxis, constituyeron una fortaleza para la investigación del IMNV, mientras que los estudios fundamentales en biología viral, epidemiología y terapéutica aún se encuentran en pañales. Es necesario que haya más investigación sobre IMNV para ajustar su modo de transmisión, sus posibles vectores, la interacción patógeno-hospedero y el desarrollo de medidas preventivas.

Fuente: Aquaculture: 477: (2017) 99:105.
Infectious Myonecrosis Virus (IMNV) – An alarming viral pathogen to Penaeid shrimps

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